| 中文摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 第一章 稀土上转换发光纳米材料用于小动物成像研究进展 | 第10-44页 |
| ·稀土上转换发光纳米材料用于小动物成像研究意义 | 第10-11页 |
| ·上转换发光的机理 | 第11-13页 |
| ·上转换发光在生物成像中的优势 | 第13-14页 |
| ·设计合成稀土上转换发光纳米材料的方法 | 第14-23页 |
| ·两步法合成亲水的稀土上转换发光纳米材料 | 第15-20页 |
| ·合成疏水的稀土上转换发光纳米材料 | 第15-16页 |
| ·合成亲水的稀土上转换发光纳米材料 | 第16-20页 |
| ·一步法合成亲水的稀土上转换发光纳米材料 | 第20-21页 |
| ·稀土上转换发光纳米材料的表面功能化 | 第21-23页 |
| ·稀土上转换发光纳米材料在小动物成像中的应用 | 第23-28页 |
| ·小动物体内的生物分布 | 第23-24页 |
| ·肿瘤靶向成像 | 第24-26页 |
| ·淋巴成像 | 第26-27页 |
| ·血管成像 | 第27-28页 |
| ·细胞示踪成像 | 第28页 |
| ·稀土上转换发光纳米材料在多模式成像中的应用 | 第28-32页 |
| ·多模式成像的意义 | 第28-31页 |
| ·稀土上转换发光纳米材料在多模式成像的应用研究进展 | 第31-32页 |
| ·本课题的设计思想及研究内容 | 第32-33页 |
| 参考文献 | 第33-44页 |
| 第二章 一种通用、简便的表面功能化配体可调的稀土上转换发光纳米材料的制备方法 | 第44-64页 |
| ·引言 | 第44-45页 |
| ·实验部分 | 第45-48页 |
| ·试剂 | 第45页 |
| ·一缩二乙二醇的UCNPs的制备(UCNPs-DEG) | 第45页 |
| ·表面功能化的UCNPs的制备 | 第45页 |
| ·表征 | 第45-46页 |
| ·氨基功能化的UCNPs(UCNPs-ADA)表面氨基(-NH_2)的定量分析 | 第46-47页 |
| ·细胞培养 | 第47页 |
| ·叶酸功能化的UCNPs(UCNPs-FA)的毒性试验 | 第47页 |
| ·活细胞扫描激光共聚焦UCL成像 | 第47-48页 |
| ·结果与讨论 | 第48-58页 |
| ·UCNPs-DEG的制备和表征 | 第48-49页 |
| ·UCNPs-OA的制备和表征 | 第49-51页 |
| ·氨基和羧基表面功能化的UCNPs的制备和表征 | 第51-54页 |
| ·叶酸功能化的UCNPs(UCNPs-FA)的靶向成像 | 第54-58页 |
| ·本章小结 | 第58页 |
| 参考文献 | 第58-64页 |
| 第三章 磁、光双功能稀土纳米材料在MRI/UCL双模式活体成像中的应用 | 第64-82页 |
| ·引言 | 第64-65页 |
| ·实验部分 | 第65-68页 |
| ·试剂 | 第65页 |
| ·水溶性、壬二酸功能化的Tm~(3+)/Er~(3+)/Yb~(3+)共掺的NaGdF_4上转换发光纳米材料(AA-NPs)的制备 | 第65-66页 |
| ·油溶性、油酸包覆的Tm~(3+)/Er~(3+)/Yb~(3+)共掺的NaGdF_4上转换发光纳米材料(OA-NPs)的制备 | 第65页 |
| ·将油溶性的OA-NPs转化为水溶性的AA-NPs | 第65-66页 |
| ·表征 | 第66页 |
| ·细胞培养和活细胞扫描激光共聚焦上转换发光成像(LSUCLM) | 第66页 |
| ·AA-NPs的活细胞毒性试验 | 第66-67页 |
| ·AA-NPs的弛豫率测试 | 第67页 |
| ·活体MRI | 第67页 |
| ·小鼠活体及体外UCL成像 | 第67-68页 |
| ·元素分析和组织切片分析 | 第68页 |
| ·结果与讨论 | 第68-78页 |
| ·AA-NPs的制备和表征 | 第68-71页 |
| ·AA-NPs的UCL光学性质及活细胞UCL成像 | 第71-72页 |
| ·AA-NPs的弛豫率测试和活体MRI | 第72-75页 |
| ·小动物活体及体外的UCL成像 | 第75-76页 |
| ·元素分析和组织切片分析 | 第76-78页 |
| ·本章小结 | 第78页 |
| 参考文献 | 第78-82页 |
| 第四章 ~(18)F标记的、Gd~(3+)/Yb~(3+)/Er~(3+)共掺的NaYF_4稀土纳米材料在PET/MRI/UCL多模式成像中的应用 | 第82-100页 |
| ·引言 | 第82-83页 |
| ·实验部分 | 第83-85页 |
| ·试剂 | 第83页 |
| ·柠檬酸功能化的上转换发光纳米材料(cit-NPs)的制备 | 第83页 |
| ·表征 | 第83页 |
| ·~(18)F标记的cit-NPs(~(18)F-cit-NPs)的制备 | 第83页 |
| ·体外弛豫率测试 | 第83-84页 |
| ·细胞培养和活细胞毒性实验 | 第84页 |
| ·活体MRI实验 | 第84页 |
| ·活体PET成像实验和体外的生物分布 | 第84-85页 |
| ·UCL成像 | 第85页 |
| ·活细胞的UCL成像 | 第85页 |
| ·组织切片的UCL成像 | 第85页 |
| ·结果与讨论 | 第85-95页 |
| ·柠檬酸包覆的纳米材料(cit-NPs)的制备和表征 | 第85-88页 |
| ·cit-NPs的细胞毒性和活细胞UCL成像 | 第88-90页 |
| ·AA-NPs的弛豫率测试和活体MRI | 第90-91页 |
| ·小动物活体PET成像及体外分布实验 | 第91-92页 |
| ·小动物体外UCL成像 | 第92-95页 |
| ·本章小结 | 第95页 |
| 参考文献 | 第95-100页 |
| 第五章 水中长期稳定的、多功能NaLuF_4稀土纳米材料在CT/MRI/UCL多模式成像中的应用 | 第100-124页 |
| ·引言 | 第100-101页 |
| ·实验部分 | 第101-104页 |
| ·试剂 | 第101页 |
| ·表征 | 第101页 |
| ·Lu-UCNPs的制备 | 第101-102页 |
| ·细胞培养 | 第102页 |
| ·活细胞UCL成像 | 第102页 |
| ·体外弛豫率测试和活体淋巴MRI | 第102-103页 |
| ·体外CT值表征和活体淋巴CT成像 | 第103页 |
| ·全身及淋巴UCL成像 | 第103-104页 |
| ·细胞电镜 | 第104页 |
| ·活细胞毒性试验 | 第104页 |
| ·组织学研究 | 第104页 |
| ·结果与讨论 | 第104-118页 |
| ·Lu-UCNPs的制备和表征 | 第104-110页 |
| ·Lu-UCNPs的弛豫率测试和活体MRI | 第110-111页 |
| ·Lu-UCNPs的HU测试和CT成像 | 第111-112页 |
| ·Lu-UCNPs的UCL成像 | 第112-114页 |
| ·Lu-UCNPs的长期稳定性 | 第114-116页 |
| ·Lu-UCNPs的毒性分析 | 第116-118页 |
| ·本章小结 | 第118页 |
| 参考文献 | 第118-124页 |
| 第六章 论文主要结论 | 第124-127页 |
| 攻读博士期间发表论文情况 | 第127-129页 |
| 致谢 | 第129-130页 |
