缩略词表 | 第1-8页 |
中文摘要 | 第8-12页 |
Abstract | 第12-16页 |
第一部分 褪黑素对大鼠胚胎中脑神经干细胞增殖和分化的影响 | 第16-49页 |
前言 | 第16-18页 |
材料和方法 | 第18-32页 |
一、实验材料 | 第18-22页 |
1.药品与试剂 | 第18-19页 |
2.仪器 | 第19-20页 |
3.工作溶液的配制 | 第20-22页 |
二、实验方法 | 第22-32页 |
1.大鼠胚胎中脑NSCs培养与鉴定 | 第22-24页 |
2.MT对胚胎中脑NSCs增殖作用的影响 | 第24-25页 |
3.MT拮抗MPP~+对胚胎中脑NSCs的毒性作用 | 第25页 |
4.MT对胚胎中脑NSCs分化方向的影响 | 第25-30页 |
5.MT对大鼠中脑NSCs神经营养因子BDNF和GDNF表达的影响 | 第30-31页 |
6.MT受体在大鼠中脑NSCs上的表达 | 第31页 |
7.统计学处理 | 第31-32页 |
结果 | 第32-41页 |
一、NSCs的鉴定 | 第32-41页 |
1.Nestin免疫细胞化学染色 | 第32-33页 |
2.端粒酶活性测定 | 第33页 |
3.MT促进大鼠胚胎中脑NSCs的增殖 | 第33-35页 |
4.MT拮抗MPP~+对胚胎中脑NSCs的神经毒作用 | 第35-37页 |
5.MT促进胚胎中脑NSCs的分化成熟 | 第37-39页 |
6.MT受体在胚胎中脑NSCs的表达 | 第39页 |
7.MT促进胚胎中脑NSCs神经营养因子BDNF和GDNF表达 | 第39-41页 |
讨论 | 第41-45页 |
小结 | 第45-46页 |
参考文献 | 第46-49页 |
第二部分 羊膜组织细胞的神经生物学特性 | 第49-68页 |
前言 | 第49-50页 |
材料与方法 | 第50-55页 |
一、试剂及仪器 | 第50-51页 |
二、实验方法 | 第51-55页 |
1.羊膜组织细胞的神经生物学特性 | 第51-53页 |
2.羊膜组织细胞的NSCs特性 | 第53-55页 |
结果 | 第55-62页 |
一、羊膜组织细胞的神经细胞特性 | 第55-57页 |
二、羊膜组织细胞的NSCs特性 | 第57-62页 |
1.NSCs特异性标记蛋白在大羊膜组织细胞中的表达 | 第57-59页 |
2.HACs具有增殖分化能力 | 第59-61页 |
3.培养的HACs可以表达GFAP和Nestin mRNA | 第61-62页 |
讨论 | 第62-65页 |
小结 | 第65-66页 |
参考文献 | 第66-68页 |
第三部分 羊膜细胞移植合并褪黑素治疗MPTP致PD小鼠模型的实验研究 | 第68-111页 |
前言 | 第68-70页 |
材料与方法 | 第70-80页 |
一、实验材料 | 第70-73页 |
1.药品与试剂 | 第70-71页 |
2.实验仪器 | 第71页 |
3.工作溶液的配制 | 第71-72页 |
4.实验动物 | 第72-73页 |
二、实验方法 | 第73-80页 |
1.实验分组 | 第73页 |
2.MPTP-PD小鼠模型的建立 | 第73页 |
3.HAEs的PKH26标记 | 第73-74页 |
4.细胞移植 | 第74-75页 |
5.动物行为学测定 | 第75页 |
6.形态学检测 | 第75-78页 |
7.纹状体BDNF和GDNF的ELISA检测 | 第78-80页 |
8.统计学处理 | 第80页 |
结果 | 第80-100页 |
一、行为学 | 第80-88页 |
1.转杆运动 | 第80-83页 |
2.自发运动 | 第83-84页 |
3.MWM实验 | 第84-88页 |
二、HACs移植和MT治疗对黑质-纹状体系统的保护作用 | 第88-93页 |
1.尼氏(Nissl)染色 | 第89页 |
2.TH免疫组织化学和荧光化学染色 | 第89-93页 |
三、移植后HACs在小鼠纹状体区的存活与分化 | 第93-96页 |
1.PKH26的荧光显色 | 第93页 |
2.HNA和HMA免疫组织化学染色 | 第93-96页 |
3.PKH26/TH免疫荧光双标 | 第96页 |
四、HACs移植和MT治疗促进小鼠脑BDNF和GDNF的分泌 | 第96-97页 |
五、对SVZ细胞增殖的影响 | 第97-100页 |
讨论 | 第100-107页 |
小结 | 第107-108页 |
参考文献 | 第108-111页 |
综述 | 第111-120页 |
个人简历 | 第120-122页 |
致谢 | 第122-123页 |