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重组牛朊病毒正常蛋白的分离纯化及淫养藿中有效成分的提取、分离和结构鉴定

第一部分第1-54页
 第一章 前言第12-19页
  1.1 变性蛋白的复性第12-13页
  1.2 蛋白质的液相色谱色谱法复性第13-15页
  1.3 朊病毒的研究进展第15-19页
   1.3.1 朊病毒的三维结构及构象转换第15-16页
   1.3.2 正常朊病毒的可能功能第16-17页
   1.3.3 朊病毒的分离纯化第17-19页
 第二章 实验部分第19-28页
  2.1 仪器与试剂第19-23页
   2.1.1 仪器第19-20页
   2.1.2 试剂第20-23页
  2.2 实验方法第23-25页
  2.3 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳第25-28页
 第三章 重组牛朊病毒正常蛋白长链片断的分离纯化第28-40页
  3.1 引言第28页
  3.2 结果与讨论第28-37页
   3.2.1 包含体清洗液浓度的选择第28-29页
   3.2.2 包含体提取液的选择第29页
   3.2.3 用HPHIC对rbPrP~cL分离纯化的色谱条件选择第29-35页
    3.2.3.1 流动相盐种类的选择第30-31页
    3.2.3.2 固定相的选择第31页
    3.2.3.3 流动相pH的选择第31-33页
    3.2.3.4 梯度选择第33-35页
   3.2.4 疏水色谱收样脱盐第35-37页
   3.2.5 蛋白质的纯度和质量回收率第37页
  3.3 HPHIC对变性蛋白复性及同时纯化的机理第37-38页
  3.4 结论第38-40页
 第四章 重组牛朊病毒正常蛋白短链片断的分离纯化第40-51页
  4.1 引言第40页
  4.2 结果与讨论第40-50页
   4.2.1 流动相盐种类的影响第40-42页
   4.2.2 固定相的影响第42-44页
   4.2.3 流动相pH的影响第44-46页
   4.2.4 梯度的影响第46-48页
   4.2.5 蛋白质的纯度和质量回收率第48-50页
  4.3 结论第50-51页
 参考文献第51-54页
第二部分第54-115页
 第五章 前言第55-60页
  5.1 淫羊藿有效成分提取和分离的意义第55-56页
  5.2 淫羊藿的活性作用及临床应用第56页
  5.3 淫羊藿中主要有效成分的提取第56-57页
   5.3.1 水提取第56页
   5.3.2 有机溶剂提取第56-57页
  5.4 淫羊藿中主要有效成分的分离第57-58页
   5.4.1 液-液萃取法第57页
   5.4.2 经典柱色谱法第57页
   5.4.3 高效液相色谱法(HPLC)第57-58页
  5.5 淫羊藿及其制剂中有效成分测定方法的研究进展第58-60页
   5.5.1 光谱法第58页
   5.5.2 高效液相色谱法第58-60页
 第六章 淫羊藿中有效成分的提取和分离第60-78页
  6.1 引言第60页
  6.2 实验部分第60-63页
   6.2.1 仪器和试剂第60页
   6.2.2 实验方法第60-63页
  6.3 结果与讨论第63-77页
   6.3.1 淫羊藿甙色谱分析方法的建立第63页
   6.3.2 淫羊藿甙峰位的确定第63-67页
   6.3.3 提取条件的选择第67-73页
    6.3.3.1 提取溶剂和提取方式的影响第67-70页
    6.3.3.2 提取时间的影响第70-72页
    6.3.3.3 温度对提取效率的影响第72页
    6.3.3.4 液固比对提取效率的影响第72-73页
    6.3.3.5 药材颗粒度第73页
   6.3.4 淫羊藿甙的回收率和浸膏得率第73-74页
   6.3.5 淫羊藿提取液的色谱分离第74-76页
   6.3.6 提取工艺的放大第76-77页
  6.4 结论第77-78页
 第七章 淫羊藿中五种主要成分的同时制备和结构鉴定第78-112页
  7.1 引言第78页
  7.2 实验部分第78-80页
   7.2.1 仪器和试剂第78-79页
   7.2.2 色谱条件第79页
   7.2.3 实验方法第79-80页
  7.3 结果与讨论第80-111页
   7.3.1 半制备色谱流动相的选择第80页
   7.3.2 半制备色谱流动相浓度的选择第80-82页
   7.3.3 半制备色谱上样量的选择第82页
   7.3.4 两种上样方式的比较第82-85页
   7.3.5 淫羊藿中主要成分的制备第85页
   7.3.6 纯度测定第85页
   7.3.7 组成及结构鉴定第85-111页
  7.4 结论第111-112页
 参考文献第112-115页
致谢第115页

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