| 第一章 文献综述 | 第1-21页 |
| §1-1 手性化合物 | 第10-12页 |
| 1-1-1 基本概念 | 第10页 |
| 1-1-2 制备光学纯化合物的意义 | 第10-11页 |
| 1-1-3 光学纯化合物的制备方法 | 第11-12页 |
| §1-2 脂肪酶 | 第12-15页 |
| 1-2-1 酶 | 第12-13页 |
| 1-2-2 酶催化的优点 | 第13页 |
| 1-2-3 酶催化的限制 | 第13页 |
| 1-2-4 脂肪酶 | 第13-14页 |
| 1-2-5 脂肪酶催化制备光学纯化合物的进展 | 第14页 |
| 1-2-6 脂肪酶催化光学拆分的原理 | 第14-15页 |
| 1-2-7 脂防酶催化光学拆分存在的问题 | 第15页 |
| 1-2-8 提高脂肪酶对映选择性的方法 | 第15页 |
| §1-3 有机相中的酶催化反应 | 第15-19页 |
| 1-3-1 基本概念 | 第15-16页 |
| 1-3-2 有机相中酶催化的影响因素 | 第16-19页 |
| §1-4 R(-)-扁桃酸 | 第19页 |
| 1-4-1 R(-)-扁桃酸的性质及用途 | 第19页 |
| 1-4-2 R(-)-扁桃酸的制备 | 第19页 |
| §1-5 本论文的研究内容 | 第19-21页 |
| 第二章 扁桃酸的酶促光学拆分 | 第21-32页 |
| §2-1 引言 | 第21页 |
| §2-2 实验材料与方法 | 第21-24页 |
| 2-2-1 实验材料 | 第21-22页 |
| 2-2-2 实验方法 | 第22页 |
| 2-2-3 分析方法 | 第22-24页 |
| 2-2-4 计算方法 | 第24页 |
| §2-3 反应体系的确立 | 第24-25页 |
| 2-3-1 溶剂的选择 | 第24-25页 |
| 2-3-2 脂肪酶的选择 | 第25页 |
| §2-4 反应条件的优化 | 第25-31页 |
| 2-4-1 反应时间的选择 | 第25-26页 |
| 2-4-2反应温度的选择 | 第26-27页 |
| 2-4-3 摇床转速的选择 | 第27页 |
| 2-4-4 底物浓度的选择 | 第27-28页 |
| 2-4-5 底物配比的选择 | 第28-29页 |
| 2-4-6 酶浓的选择 | 第29页 |
| 2-4-7 最适条件下的重复性实验 | 第29-30页 |
| 2-4-8 酶的重复利用 | 第30-31页 |
| §2-5 小结 | 第31-32页 |
| 第三章 正交实验 | 第32-38页 |
| §3-1 引言 | 第32页 |
| §3-2 实验仪器与检测方法 | 第32页 |
| 3-2-1 实验仪器和试剂：见2-2-1 | 第32页 |
| 3-2-2 R(-)-扁桃酸含量的测定：见2-2-4 | 第32页 |
| §3-3 正交实验 | 第32-36页 |
| 3-3-1 实验因素、水平的确定 | 第32-33页 |
| 3-3-2 正交实验的设计 | 第33-36页 |
| §3-5 小结 | 第36-38页 |
| 第四章 酶促反应动力学 | 第38-47页 |
| §4-1 引言 | 第38页 |
| §4-2 实验仪器与检测方法 | 第38页 |
| 4-2-1 实验仪器和试剂：见2-2-1 | 第38页 |
| 4-2-2 R(-)-扁桃酸含量的测定：见2-2-4 | 第38页 |
| §4-3 动力学模型的确立 | 第38-41页 |
| 4-3-1 模型机理 | 第38-39页 |
| 4-3-2 反应抑制的考察 | 第39-40页 |
| 4-3-3 动力学方程的确定 | 第40-41页 |
| §4-4 模型的求解和动力学分析 | 第41-46页 |
| 4-4-1 反应初速率的确定 | 第41页 |
| 4-4-2 扩散影响 | 第41-42页 |
| 4-4-3 线性方程的建立 | 第42页 |
| 4-4-4 模型参数的求解 | 第42-46页 |
| §4-5 小结 | 第46-47页 |
| 第五章 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 攻读学位期间所取得的相关科研成果 | 第53页 |