符号与缩写 | 第1-7页 |
中文摘要 | 第7-8页 |
英文摘要 | 第8-10页 |
前言 | 第10-19页 |
1 扫描电化学显微镜简介 | 第10页 |
2 实验装置 | 第10页 |
3 工作模式 | 第10-12页 |
4 SECM探头简介 | 第12-14页 |
5 SECM在细胞方面的应用 | 第14-15页 |
6 参考文献 | 第15-19页 |
第一章 双电极的制作与表征 | 第19-34页 |
·引言 | 第19-20页 |
·实验部分 | 第20-23页 |
·实验仪器 | 第20页 |
·材料、试剂及溶液 | 第20-21页 |
·实验过程 | 第21-23页 |
·双金微米电极的制作 | 第21-22页 |
·循环伏安法及电极半径的测定 | 第22页 |
·探头分别向导体基底和绝缘体基底逼近的探头逼近曲线 | 第22-23页 |
·结果和讨论 | 第23-30页 |
·双金微米电极DP70图 | 第23-24页 |
·双金微米电极的扫描电子显微镜(SEM)图 | 第24页 |
·双金微米电极表征结果与单根金微米电极表征结果的比较 | 第24-30页 |
·电极在K_3Fe(CN)_6溶液中的循环伏安曲线及电极半径的测定 | 第24-26页 |
·电极向绝缘体基底和导体基底逼近的SECM探头逼近曲线 | 第26-30页 |
·双微米电极双电极之间的相互干扰性测定 | 第30-33页 |
·测定一根电极收集另一根电极的反应产物的收集效率 | 第30-31页 |
·改变一根电极上的电压,观洲另一根电极的循环伏安曲线的变化 | 第31-33页 |
·结论 | 第33页 |
·参考文献 | 第33-34页 |
第二章 扫描电化学显微镜同时成像单个活细胞内的过氧化物酶活性和细胞形貌 | 第34-67页 |
·引言 | 第34-36页 |
·实验部分 | 第36-47页 |
·实验仪器 | 第36页 |
·材料、试剂及溶液 | 第36-38页 |
·金/金双微米电极的制备 | 第38页 |
·微量加样器的制作 | 第38页 |
·高压灭菌 | 第38-40页 |
·玻片硅烷化及HRP的固定 | 第40-41页 |
·中性粒细胞的提取 | 第41页 |
·梯度离心法提取后细胞的纯度和成活率 | 第41-42页 |
·细胞的固定及穿孔 | 第42-43页 |
·BQ、H_2Q和K_4Fe(CN)_6在双金电极上的循环伏安响应 | 第43页 |
·SECM探头Z轴渐进曲线和X-Y轴探头扫描曲线 | 第43-47页 |
·细胞内PO活性和细胞形貌的SECM图像 | 第47页 |
·结果与讨论 | 第47-64页 |
·探头的选择 | 第47-48页 |
·双金微米电极探头半径的测定 | 第48页 |
·BQ、H_2Q和K_4Fe(CN)_6在双金电极上的循环伏安响应 | 第48-49页 |
·双金电极测定中性粒细胞中PO活性和细胞形貌的最佳条件 | 第49-54页 |
·探头电位的选择 | 第49-51页 |
·最佳浓度的选择 | 第51-54页 |
·不同浓度的细胞穿孔剂Dig对细胞内PO活性的影响 | 第54-55页 |
·K_4Fe(CN)_6存在下细胞呼吸活性的变化 | 第55-56页 |
·金双微米电极在H_2Q中的探头逼近曲线 | 第56-58页 |
·双金电极同时测定中性粒细胞内PO活性和细胞形貌 | 第58-63页 |
·同时得到的细胞内PO活性和细胞形貌的SECM图(灰度图) | 第63-64页 |
·结论 | 第64页 |
·参考文献 | 第64-67页 |
第三章 SECM同时检测鼠肝细胞中的碱性磷酸酶和细胞的呼吸活性 | 第67-83页 |
·引言 | 第67-68页 |
·实验部分 | 第68-71页 |
·实验仪器 | 第68-69页 |
·材料、试剂及溶液 | 第69-70页 |
·实验过程 | 第70-71页 |
·ALP的固定 | 第70-71页 |
·鼠肝细胞的捉取 | 第71页 |
·细胞的固定及穿孔 | 第71页 |
·SECM探头Z轴渐进曲线和X-Y轴探头扫描曲线 | 第71页 |
·结果与讨论 | 第71-80页 |
·多种酚类在金电极上的循环伏安特性 | 第71-74页 |
·电极的选择 | 第74-75页 |
·金/铂双微米电极半径的测定 | 第75页 |
·最佳电位的选择 | 第75-76页 |
·最佳浓度的选择 | 第76-77页 |
·金/铂双微米电极在PAPP溶液中的探头逼近曲线 | 第77-78页 |
·金/铂双电极探头同时扫描得到的细胞周围PAP的浓度变化曲线和O_2的浓度变化曲线 | 第78-80页 |
·结论 | 第80-81页 |
·参考文献 | 第81-83页 |
致谢 | 第83页 |