| 中文摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-14页 |
| 缩写词 | 第14-15页 |
| 第一部分 前言 | 第15-29页 |
| 1． 1 概述 | 第15-16页 |
| 1． 2 PSI的结构和功能 | 第16-25页 |
| 1． 2． 1 高等植物和蓝藻PSI结构的比较 | 第16-18页 |
| 1 . 2． 2 蓝藻Synechocystis sp．PCC 6803 PSI各亚基以及亚基的功能 | 第18-20页 |
| 1 . 2． 3 高等／真核植物，PSI：各亚基以及亚基的功能 | 第20-21页 |
| 1． 2． 4 PSI蛋白亚基的组装模式 | 第21-22页 |
| 1． 2． 5 PSI的光能传递 | 第22页 |
| 1． 2 . 6 PSI的电子传递链 | 第22-25页 |
| 1． 3 PSI光抑制的研究 | 第25-27页 |
| 1． 4 关于植物体缺失PSI能否进行光合自养生长的研究 | 第27页 |
| 1． 5 本论文的研究目的和意义 | 第27-29页 |
| 第二部分 热处理对光系统I色素蛋白复合物的降解和失活作用 | 第29-62页 |
| 第一章 研究背景 | 第29-33页 |
| 1． 1 关于类囊体膜热稳定性的研究 | 第29页 |
| 1． 2 关于PSⅡ热稳定性的研究 | 第29-31页 |
| 1． 3 关于膜脂热稳定性的研究 | 第31页 |
| 1． 4 关于PSI热稳定性的研究 | 第31-33页 |
| 第二章 材料和方法 | 第33-36页 |
| 2． 1 PSI颗粒的分离纯化 | 第33-34页 |
| 2． 2 热处理 | 第34页 |
| 2． 3 吸收光谱的测定 | 第34页 |
| 2． 4 77K低温荧光光谱的测定 | 第34页 |
| 2． 5 摄氧活性的测定 | 第34页 |
| 2． 6 SDS-urea-PAGE分析 | 第34页 |
| 2． 7 FT-IR分析 | 第34-35页 |
| 2． 8 圆二色光谱(CD光谱)的测定 | 第35页 |
| 2． 9 叶绿素浓度的测定 | 第35-36页 |
| 第三章 结果 | 第36-55页 |
| 3． 1 PSI颗粒的分离纯化和光谱学特性 | 第36-38页 |
| 3． 1． 1 PSI颗粒的分离纯化 | 第36页 |
| 3． 1． 2 PSI颗粒的分离纯化和光谱学特性 | 第36-38页 |
| 3． 1． 2． 1 吸收光谱 | 第36页 |
| 3． 1． 2． 2 低温荧光光谱 | 第36-38页 |
| 3． 2 热处理对：PSI叶绿素a和叶绿素b的影响 | 第38-39页 |
| 3． 3 热处理对PSI吸收光谱的影响 | 第39-40页 |
| 3． 4 热处理对PSI77K低温荧光光谱的影响 | 第40-41页 |
| 3． 5 热处理对PSI多肽组成的影响 | 第41-42页 |
| 3． 6 热处理对PSI蛋白二级结构的影响 | 第42-47页 |
| 3． 6． 1 PSI颗粒的FT-IR概述 | 第42-43页 |
| 3． 6． 2 热处理对PSI颗粒蛋白复合物的酰胺I带的影响 | 第43-44页 |
| 3． 6． 3 25℃时PSI颗粒蛋白复合物的酰胺I带解析 | 第44-46页 |
| 3． 6． 4 25℃时PSI颗粒蛋白复合物酰胺I带的二级结构各组分的含量 | 第46页 |
| 3． 6． 5 热处理对PSI颗粒蛋白二级结构各组分含量的影响 | 第46-47页 |
| 3． 7 热处理对PSI中酪氨酸结构的影响 | 第47-49页 |
| 3． 8 热处理对PSI CD光谱的影响 | 第49-53页 |
| 3． 8． 1 PSI色素蛋白复合物的CD光谱概述 | 第50-51页 |
| 3． 8． 2 热处理对PSI色素蛋白复合物红区CD光谱的影响 | 第51-53页 |
| 3． 9 热处理对PSI颗粒摄氧能力的影响 | 第53-55页 |
| 第四章 讨论 | 第55-59页 |
| 4． 1 热处理使PSI颗粒中Chl a和Chl b的含量下降 | 第55页 |
| 4． 2 热处理对PSI颗粒的能量吸收和能量传递有巨大的影响 | 第55页 |
| 4． 3 热处理对PSI核心多肽和捕光多肽的降解作用 | 第55-56页 |
| 4． 4 热处理显著改变了PSI蛋白的二级结构 | 第56-57页 |
| 4． 5 热处理影响了PSI颗粒CD光谱中各色素组分的蛋白微环境 | 第57-58页 |
| 4． 6 热处理破坏。PSI的耗氧活性 | 第58-59页 |
| 第五章 结论与展望 | 第59-62页 |
| 第三部分 光诱导的莱茵衣藻y-1突变体转绿过程中CPI的变化 | 第62-78页 |
| 第一章 引言 | 第62-65页 |
| 1． 1 植物类囊体的生物发生 | 第62页 |
| 1． 2 衣藻y-1突变体概述 | 第62-63页 |
| 1． 3 关于y-1转绿过程中光合膜多肽的研究 | 第63-64页 |
| 1． 4 PSI核心复合物(CPI)的组成 | 第64-65页 |
| 第二章 材料和方法 | 第65-70页 |
| 2． 1 实验材料及转绿体系的建立 | 第65-67页 |
| 2． 2 类囊体膜的提取 | 第67页 |
| 2． 3 温和电泳 | 第67页 |
| 2． 4 吸收光谱及低温荧光的测定 | 第67-68页 |
| 2． 5． Western blots | 第68页 |
| 2． 6 P700含量的测定 | 第68-69页 |
| 2． 7 细胞数及叶绿素浓度的测定 | 第69-70页 |
| 第三章 结果 | 第70-77页 |
| 3． 1 温和电泳对y-1细胞类囊体膜色素蛋白复合物的分离 | 第70-74页 |
| 3． 2 转绿过程中叶绿素和细胞数的变化 | 第74-75页 |
| 3． 3 转绿过程中CPI色素蛋白核心复合物的变化 | 第75-76页 |
| 3． 4 转绿过程中PSI核心蛋白PsaA／B的变化 | 第76页 |
| 3． 5 转绿过程中P700含量的变化 | 第76-77页 |
| 第四章 讨论 | 第77-78页 |
| 第四部分 光诱导的莱茵衣藻y-1突变体转绿过程中光合膜脂、脂肪酸的变化 | 第78-93页 |
| 第一章 前言 | 第78-84页 |
| 1． 1 衣藻脂及脂肪酸组成的特点 | 第78-80页 |
| 1． 2 衣藻甘油脂代谢途径 | 第80-82页 |
| 1． 3 Ohnishi和Yamada的研究 | 第82-83页 |
| 1． 4 研究目的 | 第83-84页 |
| 第二章 实验方法 | 第84-85页 |
| 2． 1 实验材料及转绿体系的建立 | 第84页 |
| 2． 2． 膜脂的提取与分离 | 第84页 |
| 2． 3 脂肪酸分析 | 第84-85页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第85-93页 |
| 第五部分 总结 | 第93-95页 |
| 参考文献 | 第95-110页 |
| 附录一 博士期间文章发表情况 | 第110-111页 |
| 附录二 致谢 | 第111页 |
