致谢 | 第1-9页 |
中文摘要 | 第9-11页 |
英文摘要 | 第11-14页 |
第一章 文献综述与前言 | 第14-49页 |
1.1 植物的抗病基因 | 第14-19页 |
1.1.1 植物抗病基因的特征 | 第14-16页 |
1.1.2 R基因介导信号传导途径 | 第16-18页 |
1.1.3 R基因利用 | 第18-19页 |
1.2 系统获得抗性 | 第19-21页 |
1.3 植物病程相关蛋白 | 第21-29页 |
1.3.1 病程相关蛋白种类、特征及功能 | 第21-25页 |
1.3.2 病程相关蛋白的诱导表达与基因调控 | 第25-29页 |
1.4 水稻抗病性的分子生物学 | 第29-30页 |
1.4.1 水稻的R基因 | 第29页 |
1.4.2 防卫反应基因和系统获得抗性 | 第29-30页 |
1.5 水稻抗病基因工程 | 第30-37页 |
1.5.1 水稻抗真菌病害基因工程 | 第31-33页 |
1.5.2 水稻抗细菌病害基因工程 | 第33-35页 |
1.5.3 水稻抗病毒病害基因工程 | 第35-37页 |
1.5.4 展望 | 第37页 |
1.6 本研究的目的和意义 | 第37-39页 |
参考文献 | 第39-49页 |
第二章 水稻病程相关蛋白基因OsPR-4a的克隆及鉴定 | 第49-91页 |
2.1 前言 | 第49-50页 |
2.2 材料和方法 | 第50-62页 |
2.2.1 培养基、试剂和菌株 | 第50-51页 |
2.2.2 水稻幼苗培育及BTH处理与稻瘟菌接种 | 第51-52页 |
2.2.3 核酸提取与定量 | 第52页 |
2.2.4 水稻病程相关蛋白基因OsPR-4a cDNA 5’缺失端PCR扩增 | 第52-53页 |
2.2.5 OsPR-4a基因组序列克隆 | 第53-54页 |
2.2.5.1 基因组序列克隆 | 第53页 |
2.2.5.2 启动子序列克隆 | 第53-54页 |
2.2.6 载体构建 | 第54-56页 |
2.2.6.1 OsPR-4a基因原核表达载体构建 | 第54-55页 |
2.2.6.2 OsPR-4a基因启动子区域分析载体构建 | 第55页 |
2.2.6.3 OsPR-4a植物超表达载体构建 | 第55-56页 |
2.2.7 OsPR-4a原核表达及纯化蛋白的体外抑菌测定 | 第56-58页 |
2.2.8 DNA测序及序列分析 | 第58页 |
2.2.9 核酸杂交 | 第58-60页 |
2.2.9.1 Northern分析 | 第58-59页 |
2.2.9.2 Southern分析 | 第59-60页 |
2.2.10 RT-PCR分析 | 第60页 |
2.2.11 农杆菌介导的OsPR-4a基因水稻转化 | 第60-62页 |
2.3 结果与分析 | 第62-67页 |
2.3.1 OsPR4a全长cDNA的克隆 | 第62-63页 |
2.3.2 OsPR-4a有一个944 bp的内含子以单拷贝存在于水稻基因组 | 第63页 |
2.3.3 OsPR-4a的原核表达蛋白对水稻病原真菌的离体抑菌作用 | 第63-64页 |
2.3.4 OsPR-4a在水稻近等基因系和SAR中的表达 | 第64-65页 |
2.3.5 OsPR-4a基因启动子克隆 | 第65-66页 |
2.3.5.1 OsPR-4a基因启动子含有应答环境因子和激素的多种顺式元件 | 第65-66页 |
2.3.5.2 启动子区域分析载体构建 | 第66页 |
2.3.6 OsPR-4a基因对水稻的转化实验尚未取得结果 | 第66-67页 |
2.4 讨论 | 第67-71页 |
参考文献 | 第71-91页 |
第三章 水稻β-1,3-葡聚糖酶基因OsGlu的克隆 | 第91-100页 |
3.1 前言 | 第91页 |
3.2 材料与方法 | 第91-92页 |
3.2.1 OsGlu cDNA缺失端克隆 | 第92页 |
3.2.2 DNA测序及序列分析 | 第92页 |
3.3 结果 | 第92-93页 |
3.4 讨论 | 第93-94页 |
参考文献 | 第94-100页 |