摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
目录 | 第7-10页 |
引言 | 第10-11页 |
第一章 文献综述 | 第11-20页 |
·无性系培养技术在水稻遗传育种中的应用 | 第11-14页 |
·无性系培养技术的特点及机理 | 第11-13页 |
·无性系培养在水稻遗传改良中的应用 | 第13-14页 |
·离子注入在作物遗传改良中的作用 | 第14-17页 |
·离子注入在作物遗传改良中的诱变作用 | 第15-16页 |
·离子注入在作物遗传改良中的介导作用 | 第16-17页 |
·离子注入后导致生物学效应的研究状况 | 第17-18页 |
·细胞学效应 | 第17页 |
·遗传学效应 | 第17页 |
·生理学效应 | 第17-18页 |
·近旁效应 | 第18页 |
·本项研究的意义及设计方案 | 第18-20页 |
第二章 水稻种子脱分化与再分化体系的建立 | 第20-30页 |
·实验材料 | 第20页 |
·实验方法 | 第20-22页 |
·培养基及其处理 | 第21页 |
·诱导培养基 | 第21页 |
·分化培养基 | 第21页 |
·生根培养基 | 第21页 |
·培养基的不同配置方法 | 第21页 |
·分析方法 | 第21-22页 |
·结果与分析 | 第22-28页 |
·培养基类型对水稻成熟胚愈伤组织诱导率的影响 | 第22页 |
·不同2,4-D浓度对愈伤组织诱导率的影响 | 第22-25页 |
·培养基类型与6-BA浓度对愈伤组织再生能力的影响 | 第25-27页 |
·光照对愈伤组织再生率的影响 | 第27页 |
·不同培养中的PH值变化 | 第27-28页 |
·不同的培养基配制方法对愈伤组织诱导的影响 | 第28页 |
·讨论 | 第28-30页 |
第三章 离子注入对水稻愈伤组织形成的生物学效应 | 第30-38页 |
·实验材料 | 第30页 |
·实验方法 | 第30-31页 |
·诱导培养基 | 第30-31页 |
·特异植株的筛选 | 第31页 |
·结果与分析 | 第31-36页 |
·离子注入对成熟胚发芽率的影响 | 第31-33页 |
·离子注入与愈伤组织的诱导情况的关系 | 第33-35页 |
·不同剂量的离子注入对愈伤组织褐化的影响 | 第35页 |
·主要农艺形状检测 | 第35-36页 |
·讨论 | 第36-38页 |
第四章 离子注入过程中主要物理参数的初步研究 | 第38-44页 |
·实验材料 | 第38页 |
·实验方法 | 第38-39页 |
·真空处理时间与分化率的关系 | 第38-39页 |
·注入剂量与分化率之间的关系 | 第39页 |
·注入能量与分化率之间的关系 | 第39页 |
·离子注入与分化时间的关系 | 第39页 |
·实验结果与分析 | 第39-43页 |
·不同的真空处理时间对愈伤组织分化效果的影响 | 第39-40页 |
·不同的离子注入剂量对愈伤组织分化率的影响 | 第40-41页 |
·不同的离子注入能量对愈伤组织分化率的影响 | 第41-42页 |
·离子注入对愈伤组织分化时间的影响 | 第42-43页 |
·讨论 | 第43-44页 |
第五章 离子注入对水稻愈伤组织同工酶的影响 | 第44-54页 |
·实验材料 | 第44页 |
·实验方法 | 第44-47页 |
·SOD、POD、CAT活性的测定 | 第44-46页 |
·酶液的制备 | 第44-45页 |
·超氧化物酶(POD)活性的测定 | 第45页 |
·超氧化物歧化酶(SOD)活性的测定 | 第45页 |
·过氧化氢酶(CAT)活性的测定 | 第45-46页 |
·POD、SOD和酯酶的电泳分析 | 第46-47页 |
·样品的制各 | 第46页 |
·超氧化物歧化酶(SOD)电泳与染色 | 第46页 |
·超氧化物酶(POD)电泳与染色 | 第46页 |
·酯酶的电泳与染色 | 第46-47页 |
·结果和分析 | 第47-52页 |
·离子注入对超氧化物酶(POD)活性的影响 | 第47页 |
·离子注入对超氧化物其化酶(SOD)的影响 | 第47-48页 |
·离子注入对过氧化氢酶(CAT)活性的影响 | 第48-50页 |
·离子注入对过氧化物同工酶谱(POD)的影响 | 第50页 |
·离子注入对超氧化物歧化酶谱(SOD)的影响 | 第50-51页 |
·离子注入对过酯酶(Esterase)酶谱的影响 | 第51-52页 |
·讨论 | 第52-54页 |
第六章 总结 | 第54-56页 |
参考文献 | 第56-62页 |
附录I 在读期间发表的论文 | 第62-63页 |
附录II 主要符号缩写注释 | 第63-64页 |
致谢 | 第64页 |