| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-12页 |
| 第1章 引言 | 第12-15页 |
| 第2章 材料与仪器 | 第15-20页 |
| ·实验动物 | 第15页 |
| ·实验试剂 | 第15-18页 |
| ·主要购置试剂 | 第15-16页 |
| ·主要配置试剂 | 第16-18页 |
| ·实验仪器 | 第18-20页 |
| 第3章 方法 | 第20-29页 |
| ·实验思路 | 第20页 |
| ·体内实验 | 第20-22页 |
| ·实验分组 | 第20-21页 |
| ·兔体内 CVS 模型的建立 | 第21页 |
| ·选择性脑基底动脉造影及血管直径的测量 | 第21-22页 |
| ·Western blotting 技术检测Cx43 蛋白表达的变化 | 第22-25页 |
| ·总蛋白样品制备 | 第22页 |
| ·样品蛋白含量的测定 | 第22-23页 |
| ·配制 5%积层胶及 8%分离胶 | 第23页 |
| ·灌胶及上样 | 第23页 |
| ·垂直电泳 | 第23页 |
| ·转膜 | 第23-24页 |
| ·目标蛋白免疫反应 | 第24页 |
| ·目标蛋白化学发光及曝光 | 第24页 |
| ·膜再生 | 第24-25页 |
| ·内参蛋白免疫反应 | 第25页 |
| ·内参蛋白化学发光及曝光 | 第25页 |
| ·图像分析 | 第25页 |
| ·体外游离脑血管环张力实验 | 第25-26页 |
| ·实验分组 | 第25-26页 |
| ·实验系统连接和仪器参数设置 | 第26页 |
| ·兔基底动脉环的制备 | 第26页 |
| ·体外脑血管条孵育实验 | 第26-28页 |
| ·实验分组及步骤 | 第27-28页 |
| ·兔体外基底动脉条的制备 | 第28页 |
| ·数据统计分析 | 第28-29页 |
| 第4章 结果 | 第29-33页 |
| ·体内实验 | 第29-30页 |
| ·体内实验脑血管造影 | 第29页 |
| ·CVS 后各组 Cx43 蛋白表达的变化 | 第29-30页 |
| ·体外游离脑血管环张力实验 | 第30-31页 |
| ·PGF_(2a)诱导的基底动脉环张力变化 | 第30页 |
| ·PGF_(2a)+DETA-NO 诱导的血管环张力变化 | 第30-31页 |
| ·PGF_(2a)+ODQ 诱导的血管环张力变化 | 第31页 |
| ·PGF_(2a)+ODQ+DETA-NO 诱导的血管环张力变化 | 第31页 |
| ·PGF_(2a)+DMSO 诱导的血管环张力变化 | 第31页 |
| ·PGF_(2a)+CBX 诱导的血管环张力变化 | 第31页 |
| ·体外脑血管条孵育实验 | 第31-33页 |
| ·PGF_(2a)孵育后BA条Cx43蛋白表达的变化 | 第31页 |
| ·PGF_(2a)+DETA-NO 孵育后 BA 条 Cx43 蛋白表达的变 | 第31页 |
| ·PGF_(2a)+DETA-NO+ODQ 孵育后BA 条Cx43 表达的变化 | 第31页 |
| ·PGF_(2a)+ODQ 孵育后BA 条Cx43 表达的变化 | 第31页 |
| ·PGF_(2a)+DMSO 孵育后BA 条Cx43 表达的变化 | 第31页 |
| ·GJ 阻断剂孵育后基底动脉条Cx43 蛋白表达的变化 | 第31-33页 |
| 第5章 讨论 | 第33-41页 |
| ·蛛网膜下腔出血(SAH)后脑血管痉挛(CVS) | 第33页 |
| ·CVS 研究仍存在的问题 | 第33-34页 |
| ·NO 的生物特性及 SAH 后脑血管中 NO 的变化 | 第34-37页 |
| ·NO 的生物特性 | 第34页 |
| ·SAH 后脑血管中NO 的变化 | 第34-37页 |
| ·缝隙连接(gap junction GJ) | 第37-40页 |
| ·细胞GJ 的功能及调节 | 第37-38页 |
| ·缝隙连接蛋白43 | 第38-39页 |
| ·NO对Cx43及GJ功能调节的研究 | 第39-40页 |
| ·展望 | 第40-41页 |
| 第6章 结论 | 第41-42页 |
| 致谢 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-49页 |
| 附图 | 第49-53页 |
| 综述 | 第53-59页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第59页 |
