缩略语表 | 第1-6页 |
中文摘要 | 第6-8页 |
ABSTRACT | 第8-11页 |
前言 | 第11-13页 |
文献回顾 | 第13-30页 |
正文 | 第30-49页 |
1 材料 | 第30-31页 |
·试剂和仪器 | 第30-31页 |
·实验动物 | 第31页 |
2 方法 | 第31-36页 |
·主要溶液及其配制 | 第31-32页 |
·海马神经元原代培养 | 第32页 |
·黄芪对原代培养大鼠海马神经元存活的影响 | 第32-33页 |
·缺血缺氧对原代培养大鼠海马神经元的神经毒性作用及黄芪对其的影响 | 第33-34页 |
·乳酸脱氢酶(Lactatedehydrogenase,LDH) 活性的检测 | 第34页 |
·BDNF、NGF及NT-3 免疫细胞化学染色 | 第34-35页 |
·Glu对原代培养大鼠海马神经元的神经毒性作用及黄芪对其的影响 | 第35-36页 |
·统计学处理 | 第36页 |
3 结果 | 第36-45页 |
·正常培养的海马神经元形态学观察 | 第36-37页 |
·黄芪对原代培养大鼠海马神经元存活的影响 | 第37-38页 |
·黄芪对缺血缺氧损伤神经元存活的影响 | 第38-39页 |
·细胞培养液中LDH 活性变化 | 第39-41页 |
·BDNF、NGF及NT-3 表达的变化 | 第41-43页 |
·黄芪对Glu损伤神经元的作用 | 第43-45页 |
4 讨论 | 第45-49页 |
·黄芪对原代培养的海马神经元的作用 | 第45页 |
·黄芪对抗缺血缺氧损伤保护神经元的机制 | 第45-46页 |
·谷氨酸的神经毒性与凋亡有关 | 第46页 |
·黄芪对抗谷氨酸神经毒性的机制 | 第46-49页 |
小结 | 第49-50页 |
参考文献 | 第50-59页 |
个人简历和研究成果 | 第59-60页 |
致谢 | 第60页 |