中文摘要 | 第1-11页 |
Abstract | 第11-13页 |
1 引言 | 第13-26页 |
·花色素苷的生物合成及其光调控 | 第14-18页 |
·花色素苷的结构 | 第14-15页 |
·花青素的生物合成途径 | 第15-16页 |
·花色素苷合成中的调控 | 第16-18页 |
·二氢黄酮醇-4-还原酶(DFR,dihydroflavonol-4-reductase) | 第16-17页 |
·花青素-3-0-葡糖基转移酶(UFGT,UDPG-flavonoid-3-0-syltransferase) | 第17-18页 |
·MYB转录因子 | 第18-21页 |
·MYB转录因子结构特征 | 第18-19页 |
·MYB转录因子的功能 | 第19-21页 |
·隐花色素对光形态建成和花青素生物合成的影响 | 第21-24页 |
·隐花色素 | 第21-24页 |
·隐花色素与花青素合成的关系 | 第22-24页 |
·植物隐花色素 | 第22-23页 |
·隐花色素结构和功能的关系 | 第23-24页 |
·隐花色素介导花青素合成基因的表达 | 第24页 |
·植物COP1蛋白 | 第24-25页 |
·本项研究的目的意义 | 第25-26页 |
2 材料与方法 | 第26-42页 |
·实验材料 | 第26-29页 |
·植物材料 | 第26页 |
·菌株和质粒 | 第26页 |
·酶及生化试剂 | 第26页 |
·培养基 | 第26-27页 |
·PCR引物 | 第27-29页 |
·实验方法 | 第29-42页 |
·CTAB法提取RNA | 第29-30页 |
·RNA含量和纯度检测 | 第30页 |
·cDNA第一链的合成 | 第30-31页 |
·反转录产物质量检测 | 第31页 |
·cDNA纯化 | 第31-32页 |
·cDNA末端加尾 | 第32页 |
·CTAB法提取DNA | 第32-33页 |
·PCR扩增条件和程序 | 第33-37页 |
·MdCRY1基因的PCR扩增条件和程序 | 第33-34页 |
·MdCRY2 cDNA克隆 | 第34-36页 |
·MdMYB1 cDNA克隆 | 第36页 |
·MdCOP1-1cDNA克隆 | 第36页 |
·MdCOP1-2 cDNA克隆 | 第36-37页 |
·PCR扩增产物的回收 | 第37-38页 |
·PCR产物的克隆 | 第38-40页 |
·大肠杆菌DH5α感受态细胞的制备 | 第38页 |
·重组载体的构建 | 第38页 |
·重组载体转化感受态细胞 | 第38-39页 |
·阳性克隆的筛选 | 第39-40页 |
·cDNA序列测定 | 第40页 |
·实时荧光定量PCR | 第40-41页 |
·苹果果皮中花青素的测定 | 第41页 |
·MdMYB1-GFP融合载体构建、洋葱表皮细胞的基因枪转化和荧光观察 | 第41-42页 |
3 结果与分析 | 第42-58页 |
·RNA的提取和质量检测 | 第42页 |
·反转录产物质量检测 | 第42-43页 |
·苹果MdMYB1基因和MdDFR,MdUFGT启动子的克隆与表达分析 | 第43-48页 |
·MdMYB1基因的克隆和序列分析 | 第43-44页 |
·苹果MdMYB1蛋白的亚细胞定位 | 第44-45页 |
·苹果DFR和UFGT启动子的克隆及序列分析 | 第45-46页 |
·MdMYB1、MdDFR和MdUFGT基因时空表达 | 第46-47页 |
·MdMYB1、MdDFR和MdUFGT基因在自然光处理下的表达分析 | 第47-48页 |
·苹果隐花色素基因的克隆与表达分析 | 第48-54页 |
·苹果MdCRY1和MdCRY2基因的克隆 | 第48-49页 |
·MdCRY1和MdCRY2基因序列分析 | 第49-52页 |
·MdCRY1和MdCRY2基因的时空表达分析 | 第52-53页 |
·MdCRY1和MdCRY2基因在自然光处理下的表达分析 | 第53-54页 |
·苹果MdCOP1-1和MdCOP1-2基因的克隆与序列分析 | 第54-58页 |
·苹果MdCOP1-1和MdCOP1-2基因的克隆 | 第54-55页 |
·苹果MdCOP1-1和MdCOP1-2基因的序列分析 | 第55-57页 |
·MdCOP1-1和MdCOP1-2基因在自然光处理下的表达分析 | 第57-58页 |
4 讨论 | 第58-59页 |
·苹果果实花青素合成的调节模式 | 第58页 |
·苹果隐花色素、COP1与果实花青素合成 | 第58-59页 |
5 结论 | 第59-62页 |
参考文献 | 第62-71页 |
致谢 | 第71-72页 |
攻读学位期间发表的学术论文 | 第72页 |