| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-17页 |
| ·颞叶癫痫的形成机制 | 第12-13页 |
| ·神经导向因子及EPH 受体家族 | 第13-14页 |
| ·EPH 受体家族与颞叶癫痫的关系 | 第14-16页 |
| ·本文所做的工作 | 第16-17页 |
| 第二章 EphA/EphrinA 在癫痫小鼠海马表达的 RT-PCR 分析 | 第17-27页 |
| ·实验材料 | 第17-18页 |
| ·实验器材 | 第17页 |
| ·实验试剂 | 第17-18页 |
| ·实验动物 | 第18页 |
| ·实验方法 | 第18-23页 |
| ·癫痫模型动物的制作及脑组织的获取 | 第18-19页 |
| ·海马总RNA 提取 | 第19-20页 |
| ·总RNA 的检测 | 第20页 |
| ·逆转录反应体系的建立 | 第20-21页 |
| ·PCR 反应体系的建立 | 第21-23页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳 | 第23页 |
| ·凝胶图像采集 | 第23页 |
| ·统计学分析 | 第23页 |
| ·实验结果与分析 | 第23-27页 |
| 第三章 EphrinA4/EphA10mRNA 在癫痫小鼠海马的表达 | 第27-39页 |
| ·实验材料 | 第27-28页 |
| ·实验器材 | 第27页 |
| ·实验试剂 | 第27-28页 |
| ·实验动物及分组 | 第28页 |
| ·实验方法 | 第28-31页 |
| ·癫痫模型的制作，取材及前期处理 | 第28-29页 |
| ·脑组织石蜡切片的制作 | 第29-30页 |
| ·原位杂交染色（SABC 法） | 第30-31页 |
| ·图像采集 | 第31页 |
| ·实验结果及分析 | 第31-39页 |
| ·不同时间点 EphrinA4 mRNA 在海马各区中的表达变化 | 第31-34页 |
| ·不同时间点 EphA10mRNA 在海马各区中的表达变化 | 第34-39页 |
| 第四章 免疫荧光组化法检测 EphA10 在海马中的表达 | 第39-45页 |
| ·实验材料 | 第39-40页 |
| ·实验器材 | 第39页 |
| ·实验试剂 | 第39-40页 |
| ·实验动物及分组 | 第40页 |
| ·实验方法 | 第40-41页 |
| ·癫痫模型的制作，脑组织取材及前期处理 | 第40页 |
| ·脑组织石蜡切片的制作 | 第40页 |
| ·疫荧光染色(FITC 法) | 第40-41页 |
| ·图像采集 | 第41页 |
| ·实验结果及分析 | 第41-45页 |
| 第五章 Neo-Timm 法观察致痫海马苔藓纤维出芽 | 第45-51页 |
| ·实验材料 | 第45-46页 |
| ·实验器材 | 第45页 |
| ·实验试剂 | 第45-46页 |
| ·实验动物 | 第46页 |
| ·实验方法 | 第46-47页 |
| ·癫痫模型的制作、脑组织取材及前期处理 | 第46页 |
| ·冰冻切片的制作 | 第46页 |
| ·Neo-Timm 染色 | 第46-47页 |
| ·实验结果 | 第47-51页 |
| 第六章 讨论与展望 | 第51-56页 |
| ·匹罗卡品癫痫动物模型与人类颞叶癫痫在行为与病理学上的相似 性 | 第51页 |
| ·海马神经元兴奋性回路重构与颞叶癫痫 | 第51-52页 |
| ·EphA10/EphrinA4 与颞叶癫痫形成的关系 | 第52-54页 |
| ·展望 | 第54-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-61页 |
| 攻硕期间的研究成果 | 第61-62页 |
