| 致谢 | 第1-7页 |
| 前言 | 第7-9页 |
| 中文摘要 | 第9-12页 |
| 英文摘要 | 第12-16页 |
| 缩略词表 | 第16-20页 |
| 1. 马兜铃酸Ⅰ致beagle犬肾损伤时MAPEG致炎物质生成及相关蛋白表达特征 | 第20-42页 |
| ·仪器与试剂 | 第22-24页 |
| ·仪器 | 第22页 |
| ·实验动物 | 第22页 |
| ·药物与主要试剂及配制 | 第22-24页 |
| ·实验方法 | 第24-28页 |
| ·动物分组及药物处理 | 第24页 |
| ·电镜检查 | 第24-25页 |
| ·体温测定 | 第25页 |
| ·血清生化检查 | 第25页 |
| ·尿常规检查 | 第25页 |
| ·ELISA法检测cysLTs和PGE2水平 | 第25页 |
| ·Western Blot法检测蛋白表达 | 第25-26页 |
| ·LTC4合成酶系酶活力测定 | 第26-27页 |
| ·免疫组织化学及半定量分析 | 第27页 |
| ·数据分析 | 第27-28页 |
| ·实验结果 | 第28-39页 |
| ·AAI致犬肾毒性作用 | 第28-33页 |
| ·AAI致犬肾损伤对白三烯合成及相关酶表达的影响 | 第33-37页 |
| ·AAI致犬肾损伤对PGE2生成及mPGES-1蛋白表达影响 | 第37-39页 |
| ·讨论 | 第39-41页 |
| ·小结 | 第41-42页 |
| 2. MAPEG致炎信号通路激活与马兜铃酸Ⅰ致肾小管上皮细胞损伤相关性 | 第42-63页 |
| ·仪器与试剂 | 第44-45页 |
| ·仪器 | 第44页 |
| ·细胞株 | 第44页 |
| ·药物与主要试剂及配制 | 第44-45页 |
| ·实验方法 | 第45-48页 |
| ·细胞培养及接种 | 第45页 |
| ·细胞活性测定 | 第45页 |
| ·线粒体膜电位(△Ψm)检测 | 第45-46页 |
| ·细胞核损伤检测 | 第46页 |
| ·细胞凋亡形态学变化检测 | 第46页 |
| ·Western Blot法检测蛋白表达 | 第46-47页 |
| ·LTC4合成酶系酶活力测定 | 第47页 |
| ·统计学处理 | 第47-48页 |
| ·实验结果 | 第48-60页 |
| ·AAI对LLC-PK1细胞的毒性作用 | 第48-50页 |
| ·AAI致LLC-PK1细胞凋亡对MAPEG致炎物质产生的影响 | 第50-56页 |
| ·MAPK对AAI致LLC-PK1细胞凋亡及MAPEG致炎信号通路激活的影响 | 第56-60页 |
| ·讨论 | 第60-62页 |
| ·小结 | 第62-63页 |
| 附: 3. Beagle犬口服青木香或冠心苏合胶囊马兜铃酸Ⅰ体内动力学研究 | 第63-77页 |
| ·仪器与试剂 | 第64-65页 |
| ·仪器 | 第64页 |
| ·药物与主要试剂及配制 | 第64页 |
| ·实验动物 | 第64-65页 |
| ·实验方法 | 第65-67页 |
| ·beagle犬单次给药后血浆样本采集 | 第65页 |
| ·血浆样本前处理 | 第65-66页 |
| ·HPLC方法学建立 | 第66页 |
| ·HPLC法测定单次给药后beagle犬血浆样本AAI的含量 | 第66-67页 |
| ·HPLC法测定Beagle犬长期给药后体内AAI浓度 | 第67页 |
| ·HE染色考察beagle犬长期给药后肾组织形态学变化 | 第67页 |
| ·实验结果 | 第67-74页 |
| ·方法学建立 | 第67-69页 |
| ·AAI体内动力学特征 | 第69-71页 |
| ·Beagle犬长期给药后体内AAI浓度监测 | 第71-72页 |
| ·Beagle犬长期给药后肾组织形态学评价 | 第72-74页 |
| ·讨论 | 第74-76页 |
| ·小结 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-82页 |
| 综述 MAPEG家族的生物学特征及在药理毒理学研究进展 | 第82-97页 |
| 1. MAPEG家族的发现及鉴定 | 第83-84页 |
| 2. MAPEG家族生物学功能 | 第84-89页 |
| 3. MAPEG家族与药理毒理作用靶点发现 | 第89-93页 |
| 4. 展望 | 第93页 |
| 参考文献 | 第93-97页 |
| 作者简历及在学期间所取得的科研成果 | 第97-99页 |
