| 略词表 | 第1-9页 |
| 摘要 | 第9-12页 |
| ABSTRACT | 第12-15页 |
| 引言 | 第15-21页 |
| 第一章 TCP和PCP对稀有鮈鲫肝细胞毒性效应 | 第21-30页 |
| 1 材料与方法 | 第21-24页 |
| ·试剂与仪器 | 第21-22页 |
| ·原代肝细胞培养体系的建立 | 第22页 |
| ·肝细胞暴露实验 | 第22-23页 |
| ·细胞相对存活率的检测（MTT assay） | 第23页 |
| ·单细胞凝胶电泳（SCGE） | 第23页 |
| ·镜检 | 第23-24页 |
| ·数据分析 | 第24页 |
| 2 结果 | 第24-28页 |
| ·原代培养肝细胞暴露实验 | 第24-25页 |
| ·MTT实验 | 第25-26页 |
| ·单细胞凝胶电泳实验 | 第26-28页 |
| 3 讨论 | 第28-29页 |
| ·原代培养细胞暴露实验 | 第28页 |
| ·TCP和PCP暴露对肝细胞DNA损伤的影响 | 第28-29页 |
| 4 小结 | 第29-30页 |
| 第二章 TCP和PCP对稀有鮈鲫肝脏毒性 | 第30-44页 |
| 1 材料与方法 | 第30-34页 |
| ·试剂与仪器 | 第30页 |
| ·实验动物 | 第30-32页 |
| ·组织病理学观察 | 第32-33页 |
| ·脏器指数 | 第33页 |
| ·样品的制备 | 第33页 |
| ·肝脏组织酶活性和蛋白质含量的测定 | 第33页 |
| ·流水暴露系统实际暴露浓度的测定 | 第33-34页 |
| ·统计分析 | 第34页 |
| 2 结果 | 第34-42页 |
| ·暴露体系TCP和PCP浓度控制及流水暴露体系评价 | 第34-35页 |
| ·肝脏病理学改变 | 第35-39页 |
| ·PCP和TCP暴露对稀有鮈鲫体长、体重的影响 | 第39-40页 |
| ·稀有鮈鲫脏器系数的变化 | 第40-41页 |
| ·PCP对稀有鮈鲫肝脏SOD、MDA、LDH、GST活性的影响 | 第41-42页 |
| 3 讨论 | 第42-43页 |
| ·TCP和PCP暴露对稀有鮈鲫脏细胞组织结构变化的分析 | 第42页 |
| ·CPs对稀有鮈鲫肝脏SOD、MDA、LDH、GST活性影响的分析 | 第42-43页 |
| 4 小结 | 第43-44页 |
| 第三章 TCP和PCP对稀有鮈鲫肝脏毒性效应比较蛋白质组学研究 | 第44-63页 |
| 1 材料与方法 | 第44-50页 |
| ·实验材料 | 第44-45页 |
| ·流水暴露实验 | 第45页 |
| ·蛋白样品制备 | 第45-46页 |
| ·二维凝胶电泳（2-DE） | 第46-48页 |
| ·胶的染色 | 第48-49页 |
| ·2-DE图像扫描及分析 | 第49页 |
| ·质谱分析 | 第49-50页 |
| 2 结果 | 第50-61页 |
| ·2-DE图像扫描与分析 | 第50-56页 |
| ·质谱鉴定 | 第56-61页 |
| ·差异蛋白的功能分类 | 第61页 |
| 3 讨论 | 第61-62页 |
| 4 小结 | 第62-63页 |
| 第四章 氯酚类化合物对稀有鮈鲫肝脏毒性效应分析 | 第63-86页 |
| 1. 材料与方法 | 第63-68页 |
| ·实验材料 | 第63-64页 |
| ·二维凝胶电泳（2-DE） | 第64页 |
| ·与损伤相关基因的荧光定量PCR检测 | 第64-68页 |
| 2. 结果 | 第68-82页 |
| ·稀有鮈鲫肝脏细胞总RNA | 第68-69页 |
| ·稀有鮈鲫肝脏细胞目的基因PCR产物 | 第69页 |
| ·稀有鮈鲫肝脏损伤相关基因定量PCR产物 | 第69-70页 |
| ·mRNA 表达水平的分析 | 第70-76页 |
| ·CPs暴露组致肝脏损伤的 2-DE图 | 第76-80页 |
| ·mRNA 和蛋白表达水平的比较 | 第80-82页 |
| 3. 讨论 | 第82-86页 |
| ·与肝脏转运功能相关的蛋白 | 第82-83页 |
| ·和代谢相关功能相关的蛋白 | 第83-84页 |
| ·和氧化应激功能有关的蛋白 | 第84页 |
| ·和其他功能相关的蛋白 | 第84-86页 |
| 全文结论 | 第86-88页 |
| 参考文献 | 第88-95页 |
| 综述 | 第95-103页 |
| 代表性论文 | 第103-117页 |
| 个人简介、在学期间发表论文情况与研究成果 | 第117-119页 |
| 致谢 | 第119页 |
