| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-9页 |
| 第一章文献综述 | 第9-20页 |
| 1.1生物巯基化合物生理病理意义 | 第9-10页 |
| 1.2生物硫醇的检测方法 | 第10页 |
| 1.3生物硫醇探针的研究进展 | 第10-18页 |
| 1.3.1基于亲核加成反应检测巯基化合物 | 第11-12页 |
| 1.3.2基于酯键和磺酰胺键断裂的生物硫醇检测方法 | 第12-14页 |
| 1.3.3基于醚键断裂检测生物硫醇 | 第14-16页 |
| 1.3.4基于α,β-不饱和醛酮的加成反应检测生物硫醇 | 第16-18页 |
| 1.4本研究课题的来源及主要研究内容 | 第18-20页 |
| 第二章ESIPT型荧光探针对半胱氨酸的选择性检测及细胞成像 | 第20-39页 |
| 2.1研究背景 | 第20-21页 |
| 2.2实验部分 | 第21-23页 |
| 2.2.1试剂和仪器 | 第21页 |
| 2.2.2探针的合成 | 第21-22页 |
| 2.2.3ABT-MVK光谱测量 | 第22页 |
| 2.2.4ABT-MVK检测限的测定 | 第22页 |
| 2.2.5细胞培养和毒性研究 | 第22-23页 |
| 2.2.6细胞荧光成像 | 第23页 |
| 2.3结果与讨论 | 第23-32页 |
| 2.3.1探针ABT-MVK的设计与合成 | 第23-24页 |
| 2.3.2检测条件优化 | 第24-25页 |
| 2.3.3ABT-MVK对Cys的识别性能 | 第25-27页 |
| 2.3.4ABT-MVK与Cys的反应机制探究 | 第27-28页 |
| 2.3.5选择性和竞争能力研究 | 第28-30页 |
| 2.3.6活细胞的细胞毒性测定和细胞内荧光成像 | 第30-32页 |
| 2.4本章小结 | 第32-34页 |
| 2.5附图 | 第34-39页 |
| 第三章ESIPT和ICT型荧光探针选择性检测半胱氨酸及细胞成像 | 第39-55页 |
| 3.1研究背景 | 第39-40页 |
| 3.2实验部分 | 第40-41页 |
| 3.2.1试剂和仪器 | 第40页 |
| 3.2.2探针的合成 | 第40-41页 |
| 3.2.3DEASA光谱测量 | 第41页 |
| 3.2.4DEASA检测限的测定 | 第41页 |
| 3.2.5细胞培养及毒性研究 | 第41页 |
| 3.2.6细胞荧光成像 | 第41页 |
| 3.3结果与讨论 | 第41-52页 |
| 3.3.1探针DEASA的设计与合成 | 第41-42页 |
| 3.3.2检测条件优化 | 第42-45页 |
| 3.3.3探针DEASA对Cys的识别性能 | 第45-46页 |
| 3.3.4探针DEASA与Cys的反应机理 | 第46-48页 |
| 3.3.5选择性和干扰性实验 | 第48-49页 |
| 3.3.6活细胞的细胞毒性测定和荧光成像 | 第49-52页 |
| 3.4本章小结 | 第52-53页 |
| 3.5附图 | 第53-55页 |
| 第四章双光子零背景荧光探针对GSH的选择性检测及其应用 | 第55-78页 |
| 4.1研究背景 | 第55-56页 |
| 4.2实验部分 | 第56-59页 |
| 4.2.1试剂和仪器 | 第56页 |
| 4.2.2探针SA和化合物2的合成 | 第56-57页 |
| 4.2.3SA光谱测量 | 第57页 |
| 4.2.4GSH的检测限测定 | 第57页 |
| 4.2.5双光子吸收截面的测定 | 第57页 |
| 4.2.6细胞培养和荧光成像方法 | 第57-58页 |
| 4.2.7细胞毒性研究 | 第58页 |
| 4.2.8新鲜大鼠脑切片的制备和染色 | 第58页 |
| 4.2.9水果中GSH的测定和荧光成像 | 第58-59页 |
| 4.3结果与讨论 | 第59-74页 |
| 4.3.1探针SA的设计、合成 | 第59-62页 |
| 4.3.2优化检测条件 | 第62-65页 |
| 4.3.3探针SA对GSH的体外检测性能 | 第65-68页 |
| 4.3.4体内GSH的荧光成像 | 第68-73页 |
| 4.3.5食品样品中GSH的定量测定和成像 | 第73-74页 |
| 4.4本章小结 | 第74-75页 |
| 4.5附图 | 第75-78页 |
| 结论 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-85页 |
| 附录 | 第85-86页 |
| 致谢 | 第86-87页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第87-88页 |
