| 致谢 | 第1-12页 |
| 缩略词表 | 第12-13页 |
| 摘要 | 第13-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-30页 |
| ·果树遗传转化方法 | 第15-19页 |
| ·载体转化系统 | 第15-17页 |
| ·直接转化系统 | 第17-18页 |
| ·种质系统介导遗传转化 | 第18-19页 |
| ·影响农杆菌介导果树遗传转化的主要因素 | 第19-21页 |
| ·受体系统的建立 | 第19页 |
| ·受体材料的预培养 | 第19页 |
| ·不同的农杆菌的侵染能力 | 第19页 |
| ·农杆菌菌液浓度和侵染时间 | 第19-20页 |
| ·共培养时间 | 第20页 |
| ·选择标记基因与转化细胞的筛选 | 第20-21页 |
| ·转基因植株的鉴定 | 第21页 |
| ·基因工程在果树育种中的应用 | 第21-23页 |
| ·抗病、虫害新品种的培育 | 第21-22页 |
| ·果实性状的改良 | 第22页 |
| ·矮化品种的培育 | 第22页 |
| ·提高果树抗逆性 | 第22页 |
| ·其它性状的改良 | 第22-23页 |
| ·猕猴桃组织培养及遗传转化研究进展 | 第23-24页 |
| ·猕猴桃组织培养研究进展 | 第23-24页 |
| ·猕猴桃遗传转化研究进展 | 第24页 |
| ·枣叶片直接再生及遗传转化研究进展 | 第24-26页 |
| ·枣叶片直接再生的研究进展 | 第24-25页 |
| ·枣遗传转化的研究进展 | 第25-26页 |
| ·抗菌肽及其在果树抗病基因工程中的应用 | 第26页 |
| ·抗菌肽的产生 | 第26页 |
| ·抗菌肽在植物基因工程中的应用 | 第26页 |
| ·果树遗传转化研究的优势及存在的问题 | 第26-27页 |
| ·果树遗传转化研究的优势 | 第26-27页 |
| ·果树遗传转化研究存在的问题 | 第27页 |
| ·研究意义与技术路线 | 第27-30页 |
| ·研究意义 | 第27-28页 |
| ·技术路线 | 第28-30页 |
| 第二章 中华猕猴桃叶片再生体系的建立 | 第30-36页 |
| 1 材料与方法 | 第30-31页 |
| ·材料 | 第30-31页 |
| ·植物材料 | 第30页 |
| ·药品试剂 | 第30页 |
| ·仪器设备 | 第30-31页 |
| ·方法 | 第31页 |
| ·中华猕猴桃‘伏牛95-2’叶片愈伤组织及不定芽的诱导 | 第31页 |
| ·叶片诱导不定芽的增殖培养 | 第31页 |
| ·叶片诱导不定芽的生根培养 | 第31页 |
| ·培养条件 | 第31页 |
| ·数据统计与分析 | 第31页 |
| 2 结果与分析 | 第31-34页 |
| ·愈伤组织的诱导与不定芽再生 | 第31-33页 |
| ·不定芽的增殖培养 | 第33页 |
| ·不定芽的生根培养 | 第33-34页 |
| 3 结论与讨论 | 第34-35页 |
| 图版 | 第35-36页 |
| 第三章 抗生素对中华猕猴桃外植体生长的影响 | 第36-45页 |
| 1 材料与方法 | 第36-37页 |
| ·材料 | 第36页 |
| ·培养基及主要试剂 | 第36-37页 |
| ·方法 | 第37页 |
| ·抗生素对叶片愈伤组织及不定芽诱导的影响 | 第37页 |
| ·抗生素对生根的影响 | 第37页 |
| ·遗传转化选择培养中抗菌素及浓度的确定 | 第37页 |
| ·数据处理 | 第37页 |
| 2 结果与分析 | 第37-41页 |
| ·抗生素对中华猕猴桃‘伏牛95-2’叶片愈伤组织及不定芽诱导的影响 | 第37-40页 |
| ·卡那霉素对中华猕猴桃‘伏牛95-2’叶片愈伤组织及不定芽诱导的影响 | 第37-38页 |
| ·抑菌抗生素对中华猕猴桃‘伏牛95-2’叶片愈伤组织及不定芽诱导的影响 | 第38-40页 |
| ·抗生素对中华猕猴桃‘伏牛95-2’不定芽生根的影响 | 第40-41页 |
| ·卡那霉素对中华猕猴桃‘伏牛95-2’不定芽生根的影响 | 第40页 |
| ·头孢霉素对中华猕猴桃‘伏牛95-2’不定芽生根的影响 | 第40-41页 |
| ·选择培养中抑菌素及浓度的确定 | 第41页 |
| 3 结论与讨论 | 第41-43页 |
| 图版 | 第43-45页 |
| 第四章 农杆菌介导中华猕猴桃遗传转化体系的建立 | 第45-55页 |
| 1 材料与方法 | 第45-50页 |
| ·材料 | 第45-46页 |
| ·植物材料与质粒 | 第45-46页 |
| ·培养基 | 第46页 |
| ·主要仪器、试剂及溶液配制 | 第46-47页 |
| ·主要仪器 | 第46页 |
| ·试剂 | 第46页 |
| ·主要试剂配制方法 | 第46-47页 |
| ·方法 | 第47-50页 |
| ·外植体准备 | 第47页 |
| ·农杆菌培养和活化 | 第47-48页 |
| ·转化 | 第48页 |
| ·影响农杆菌转化效果的因素 | 第48页 |
| ·GUS组织化学检测 | 第48页 |
| ·转基因猕猴桃的分子生物学鉴定 | 第48-50页 |
| 2 结果与分析 | 第50-53页 |
| ·不同侵染方式对GUS基因瞬时表达率的影响 | 第50页 |
| ·预培养时间对GUS基因瞬时表达率的影响 | 第50页 |
| ·菌液浓度对GUS基因瞬时表达率的影响 | 第50-51页 |
| ·共培养时间对GUS基因瞬时表达率的影响 | 第51页 |
| ·转化植株再生与分子检测 | 第51-53页 |
| ·转化植株及GUS组织化学检测 | 第51页 |
| ·转化植株分子检测 | 第51-53页 |
| 3 结论与讨论 | 第53-55页 |
| ·侵染方式 | 第53页 |
| ·预培养时间 | 第53页 |
| ·菌液浓度 | 第53-54页 |
| ·共培养时间 | 第54-55页 |
| 第五章 农杆菌介导抗菌肽D基因转化中华猕猴桃的研究 | 第55-64页 |
| 1 材料与方法 | 第55-60页 |
| ·材料 | 第55页 |
| ·转化 | 第55-56页 |
| ·菌液制备 | 第55页 |
| ·遗传转化 | 第55-56页 |
| ·不同筛选方式对遗传转化的影响 | 第56页 |
| ·猕猴桃基因组DNA的提取及酶切 | 第56-57页 |
| ·猕猴桃基因组DNA的提取 | 第56页 |
| ·猕猴桃基因组DNA的酶切 | 第56-57页 |
| ·转基因植株PCR检测 | 第57页 |
| ·转基因植株的Southern印迹杂交检测 | 第57-60页 |
| ·主要仪器 | 第57页 |
| ·溶液配制 | 第57-58页 |
| ·样品制备 | 第58页 |
| ·探针的制备 | 第58页 |
| ·转膜(高盐转移法) | 第58-59页 |
| ·杂交 | 第59页 |
| ·洗膜和免疫检测 | 第59-60页 |
| 2. 结果与分析 | 第60-62页 |
| ·筛选方式对转化率的影响 | 第60页 |
| ·转抗菌肽D基因植株的获得 | 第60页 |
| ·转基因猕猴桃的PCR检测 | 第60-61页 |
| ·转基因植株的Southern杂交检测 | 第61-62页 |
| ·PCR-Southern blot检测 | 第61-62页 |
| ·Southern blot检测 | 第62页 |
| 3. 结论与讨论 | 第62-64页 |
| 第六章 灰枣组培快繁体系的建立 | 第64-75页 |
| 1 材料与方法 | 第64-66页 |
| ·材料 | 第64-65页 |
| ·试验方法 | 第65-66页 |
| ·灰枣组织培养启动培养 | 第65页 |
| ·继代培养 | 第65页 |
| ·生根培养 | 第65-66页 |
| 2 结果与分析 | 第66-71页 |
| ·启动培养 | 第66-69页 |
| ·不同灭菌时间对外植体灭菌的影响 | 第66页 |
| ·抗生素对污染的抑制效果 | 第66-67页 |
| ·抗生素对灰枣外植体腋芽萌芽率的影响 | 第67-68页 |
| ·启动培养基的筛选 | 第68-69页 |
| ·不同植物生长调节物质对继代培养的影响 | 第69-70页 |
| ·不同生长素及浓度对不定芽生根的影响 | 第70-71页 |
| 3 结论与讨论 | 第71-73页 |
| ·灰枣的启动培养 | 第71-72页 |
| ·外植体的灭菌处理 | 第71页 |
| ·抗生素对污染的抑制 | 第71-72页 |
| ·抗生素对外植体生长的影响 | 第72页 |
| ·灰枣启动培养基的筛选 | 第72页 |
| ·灰枣不定芽的继代培养 | 第72-73页 |
| ·灰枣不定芽的生根培养 | 第73页 |
| 图版 | 第73-75页 |
| 第七章 灰枣叶片直接分化不定芽的研究 | 第75-82页 |
| 1 材料与方法 | 第75-76页 |
| ·材料 | 第75页 |
| ·试验方法 | 第75-76页 |
| ·叶片再生培养基的筛选 | 第75页 |
| ·影响叶片再生的因素 | 第75页 |
| ·数据统计与分析 | 第75-76页 |
| 2 结果与分析 | 第76-79页 |
| ·培养基对灰枣叶片再生不定芽的影响 | 第76-77页 |
| ·不同部位叶片对灰枣叶片再生不定芽的影响 | 第77页 |
| ·同一叶片不同部位对灰枣叶片再生不定芽的影响 | 第77-78页 |
| ·接种方向对灰枣叶片再生不定芽的影响 | 第78页 |
| ·蔗糖浓度对灰枣叶片再生不定芽的影响 | 第78-79页 |
| ·暗培养时间对灰枣叶片再生不定芽的影响 | 第79页 |
| 3 结论与讨论 | 第79-81页 |
| ·外植体对灰枣叶片再生不定芽的影响 | 第79-80页 |
| ·培养基对灰枣叶片再生不定芽的影响 | 第80页 |
| ·光照条件对灰枣叶片再生的影响 | 第80页 |
| ·蔗糖对灰枣叶片再生的影响 | 第80-81页 |
| 图版 | 第81-82页 |
| 第八章 乙烯抑制剂对灰枣叶片再生的影响 | 第82-85页 |
| 1 材料与方法 | 第82-83页 |
| ·材料 | 第82页 |
| ·试验方法 | 第82-83页 |
| ·硝酸银对枣不定芽再生的影响 | 第82页 |
| ·硫代硫酸银对枣不定芽再生的影响 | 第82页 |
| ·数据统计与分析 | 第82-83页 |
| 2 结果与分析 | 第83-84页 |
| ·硝酸银对灰枣叶片不定芽再生的影响 | 第83页 |
| ·硫代硫酸银对枣不定芽再生的影响 | 第83-84页 |
| 3 结论与讨论 | 第84-85页 |
| 第九章 灰枣对抗生素敏感性及遗传转化的研究 | 第85-91页 |
| 1 材料与方法 | 第85-86页 |
| ·材料 | 第85页 |
| ·试验方法 | 第85-86页 |
| ·灰枣对Kan敏感性试验 | 第85页 |
| ·农杆菌菌液的制备 | 第85页 |
| ·转化 | 第85-86页 |
| ·抑菌抗生素对外植体共培养后抑菌效果 | 第86页 |
| ·转化植株的获得与检测 | 第86页 |
| 2 结果与分析 | 第86-88页 |
| ·灰枣对卡那霉素的敏感性试验 | 第86页 |
| ·不同浓度头孢霉素抑菌效果 | 第86-87页 |
| ·共培养时间对抗性芽再生的影响 | 第87页 |
| ·转GUS基因植株的获得及检测 | 第87-88页 |
| 3 结论与讨论 | 第88-89页 |
| ·灰枣遗传转化中卡那霉素浓度的筛选 | 第88页 |
| ·灰枣遗传转化中抑菌素浓度的筛选 | 第88页 |
| ·灰枣遗传转化中共培养时间的筛选 | 第88页 |
| ·转化植株的获得与检测 | 第88-89页 |
| 图版 | 第89-90页 |
| 图版说明 | 第90-91页 |
| 参考文献 | 第91-104页 |
| 英文摘要 | 第104-107页 |
| 在博士研究生学习期间发表相关论文情况 | 第107页 |
