| 中文摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-13页 |
| 缩略语 | 第13-15页 |
| 前言 | 第15-18页 |
| 研究现状、成果 | 第15-16页 |
| 研究目的、方法 | 第16-18页 |
| 一、热休克蛋白90抑制剂对未分化甲状腺癌细胞增殖和凋亡的影响(体外研究) | 第18-70页 |
| ·对象和方法 | 第19-45页 |
| ·材料 | 第19-22页 |
| ·方法 | 第22-45页 |
| ·结果 | 第45-59页 |
| ·17-AAG作用后ATC细胞的存活分析 | 第45-52页 |
| ·流式细胞仪检测17-AAG作用后ATC细胞周期的变化 | 第52-56页 |
| ·流式细胞仪检测17-AAG作用后ATC细胞凋亡率的变化 | 第56-58页 |
| ·Western blot鉴定17-AAG作用后ATC细胞HSP90和癌蛋白表达的变化 | 第58-59页 |
| ·讨论 | 第59-68页 |
| ·HSP90与HSP90抑制剂 | 第59-63页 |
| ·17-AAG对ATC细胞的增殖抑制作用 | 第63-64页 |
| ·17-AAG对ATC细胞周期的阻滞作用 | 第64-65页 |
| ·17-AAG可诱导ATC细胞凋亡 | 第65-66页 |
| ·17-AAG可阻断ATC细胞内的信号转导通路 | 第66-68页 |
| ·小结 | 第68-70页 |
| 二、热休克蛋白90抑制剂对未分化甲状腺癌细胞摄碘动力学的影响(体外研究) | 第70-115页 |
| ·对象和方法 | 第71-86页 |
| ·材料 | 第71-73页 |
| ·方法 | 第73-86页 |
| ·结果 | 第86-105页 |
| ·pcDNA3.1-hNIS质粒的提取及鉴定 | 第86-87页 |
| ·pcDNA3.1-hNIS质粒转染ATC细胞24h的瞬时摄~(125)I能力 | 第87-88页 |
| ·G418筛选转染pcDNA3.1-hNIS质粒的ATC细胞 | 第88-95页 |
| ·正常生长的ATC细胞的摄~(125)I动力学 | 第95-96页 |
| ·稳定表达hNIS的ATC细胞的摄~(125)I动力学 | 第96-100页 |
| ·稳定表达hNIS的ATC细胞的过氯酸盐抑制实验 | 第100-101页 |
| ·17-AAG对稳定表达hNIS的ATC细胞摄~(125)I动力学的影响 | 第101-105页 |
| ·讨论 | 第105-113页 |
| ·hNIS | 第105-106页 |
| ·基因工程与核素治疗的完美结合 | 第106-109页 |
| ·基因工程与核素治疗相结合尚存在一些不足 | 第109-112页 |
| ·17-AAG对稳定表达hNIS的ATC细胞摄~(125)I动力学的影响 | 第112-113页 |
| ·小结 | 第113-115页 |
| 全文结论 | 第115-117页 |
| 论文创新点 | 第117-118页 |
| 参考文献 | 第118-126页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第126-127页 |
| 综述 甲状腺肿瘤的药物治疗研究现状 | 第127-145页 |
| 综述参考文献 | 第137-145页 |
| 致谢 | 第145页 |
