| 摘要 | 第2-3页 |
| Abstract | 第3-4页 |
| 引言 | 第8-9页 |
| 1 绪论 | 第9-23页 |
| 1.1 微流控芯片技术概述 | 第9-16页 |
| 1.1.1 微流控芯片技术简介与发展 | 第9-10页 |
| 1.1.2 微流控芯片分类 | 第10-11页 |
| 1.1.3 高分子聚合物微流控芯片的制作 | 第11-14页 |
| 1.1.4 微流控芯片细胞培养 | 第14-16页 |
| 1.2 三维细胞培养技术 | 第16页 |
| 1.3 内毒素血症与糖尿病 | 第16-22页 |
| 1.3.1 内毒素血症概述 | 第16-17页 |
| 1.3.2 糖尿病概述及形势 | 第17-19页 |
| 1.3.3 胰岛的生理结构与功能 | 第19-20页 |
| 1.3.4 内毒素血症、肥胖与糖尿病的关系 | 第20-22页 |
| 1.4 本论文的研究目的与意义 | 第22-23页 |
| 2 实验部分 | 第23-41页 |
| 2.1 实验试剂、材料及仪器 | 第23-28页 |
| 2.1.1 用于微流控芯片制作的试剂、材料和仪器 | 第23-24页 |
| 2.1.2 用于细胞培养的试剂、材料与仪器 | 第24-26页 |
| 2.1.3 原代组织提取的试剂、材料与仪器 | 第26-27页 |
| 2.1.4 用于微流控芯片运行及检测的实验试剂、材料与仪器 | 第27-28页 |
| 2.1.5 试剂配制 | 第28页 |
| 2.2 微流控芯片的设计与制作 | 第28-31页 |
| 2.2.1 微流控芯片设计 | 第28-29页 |
| 2.2.2 微流控芯片阳模的制作 | 第29-30页 |
| 2.2.3 PDMS基片的制作 | 第30-31页 |
| 2.2.4 PDMS基片的封接 | 第31页 |
| 2.2.5 微流控芯片三维细胞培养池物质交换能力测试 | 第31页 |
| 2.3 大鼠胰岛细胞瘤细胞(INS-1)培养及原代脂肪组织提取 | 第31-35页 |
| 2.3.1 大鼠胰岛细胞瘤细胞(INS-1)培养方法 | 第31-32页 |
| 2.3.2 大鼠胰岛细胞瘤细胞(INS-1)表征 | 第32-33页 |
| 2.3.3 大鼠原代脂肪组织提取方法 | 第33-34页 |
| 2.3.4 大鼠原代脂肪组织的培养及表征 | 第34-35页 |
| 2.4 共培养微流控芯片搭建、状态表征及培养池厚度优化 | 第35-36页 |
| 2.4.1 共培养微流控芯片搭建 | 第35页 |
| 2.4.2 INS-1细胞与脂肪组织状态表征 | 第35-36页 |
| 2.4.3 下游微流控芯片三维培养池厚度的优化 | 第36页 |
| 2.5 脂多糖(LPS)诱导二维大鼠胰岛细胞瘤细胞(INS-1)损伤模型构建. | 第36-38页 |
| 2.5.1 绘制96孔板中不同细胞密度的生长曲线 | 第36页 |
| 2.5.2 脂多糖(LPS)造模浓度及时间的筛选 | 第36-37页 |
| 2.5.3 Transwell小室中脂肪组织与二维大鼠胰岛细胞瘤细胞(INS-1)共培养造模 | 第37-38页 |
| 2.6 脂多糖(LPS)诱导三维大鼠胰岛细胞瘤细胞(INS-1)损伤模型构建. | 第38-41页 |
| 2.6.1 Transwell小室中脂肪组织与三维大鼠胰岛细胞瘤细胞(INS-1)共培养模型构建 | 第38-39页 |
| 2.6.2 共培养微流控芯片模型搭建 | 第39页 |
| 2.6.3 脂多糖(LPS)诱导脂肪组织与INS-1细胞三维共培养损伤微流控芯片模型构建 | 第39-41页 |
| 3 结果与讨论 | 第41-56页 |
| 3.1 共培养微流控芯片的设计与制作 | 第41-44页 |
| 3.1.1 用于脂肪组织悬浮培养的微流控芯片的设计与制作 | 第41页 |
| 3.1.2 便于倒置显微镜检测的INS-1细胞三维培养芯片的设计与制作 | 第41-42页 |
| 3.1.3 INS-1细胞三维培养芯片物质交换能力测试及优化 | 第42-43页 |
| 3.1.4 高通量共培养微流控芯片的搭建 | 第43-44页 |
| 3.2 脂多糖(LPS)诱导二维大鼠胰岛细胞瘤细胞(INS-1)损伤模型构建结果 | 第44-50页 |
| 3.2.1 大鼠胰岛细胞瘤细胞(INS-1)与大鼠脂肪组织表征 | 第44-45页 |
| 3.2.2 96孔板中不同密度INS-1细胞的生长曲线 | 第45-46页 |
| 3.2.3 脂多糖(LPS)造模浓度及造模时间的筛选 | 第46-48页 |
| 3.2.4 Transwell小室中脂肪组织与二维大鼠胰岛细胞瘤细胞(INS-1)共培养造模结果 | 第48-50页 |
| 3.3 脂多糖(LPS)诱导三维大鼠胰岛细胞瘤细胞(INS-1)损伤模型构建结果 | 第50-56页 |
| 3.3.1 Transwell小室中脂肪组织与三维大鼠胰岛细胞瘤细胞(INS-1)共培养造模结果 | 第50-52页 |
| 3.3.2 脂多糖(LPS)诱导脂肪组织与三维大鼠胰岛细胞瘤细胞(INS-1)损伤芯片模型构建结果 | 第52-56页 |
| 结论 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-62页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63-65页 |
