| 中文摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 引言 | 第12-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-26页 |
| ·知母的研究进展 | 第13-19页 |
| ·知母皂苷 | 第13-18页 |
| ·双苯吡酮 | 第18页 |
| ·知母多糖 | 第18-19页 |
| ·Ⅱ型糖尿病(T2DM)的研究进展 | 第19-23页 |
| ·T2DM 的发病及治疗机制 | 第19-21页 |
| ·糖尿病的诊疗标准 | 第21-23页 |
| ·代谢组学的研究进展 | 第23-25页 |
| ·代谢组学定义 | 第23页 |
| ·代谢组学研究流程 | 第23-24页 |
| ·代谢组学技术在糖尿病中的应用 | 第24-25页 |
| ·本研究的目的意义 | 第25-26页 |
| 第二章 知母提取物成分分析 | 第26-51页 |
| ·引言 | 第26页 |
| ·实验材料 | 第26-27页 |
| ·主要实验药品及试剂 | 第26页 |
| ·主要仪器和设备 | 第26-27页 |
| ·知母提取物的制备 | 第27页 |
| ·方法与结果 | 第27-31页 |
| ·溶液的制备 | 第27页 |
| ·液相分离色谱条件 | 第27-28页 |
| ·UPLC/Q-TOF MS 分析 | 第28-31页 |
| ·结果讨论 | 第31-49页 |
| ·色谱条件的选择 | 第31-32页 |
| ·质谱参数的选择 | 第32页 |
| ·二级质谱参数的选择 | 第32-33页 |
| ·知母醇提物组分的质谱鉴定 | 第33-49页 |
| ·本章小结 | 第49-51页 |
| 第三章 实验性Ⅱ型糖尿病大鼠模型的建立以及知母提取物的初步药效学研究 | 第51-71页 |
| ·引言 | 第51页 |
| ·实验材料 | 第51-53页 |
| ·主要实验药品及试剂 | 第51-52页 |
| ·主要仪器和设备 | 第52页 |
| ·实验对象 | 第52页 |
| ·主要试剂的配制 | 第52-53页 |
| ·实验方法 | 第53-55页 |
| ·Ⅱ型糖尿病大鼠模型的建立 | 第53页 |
| ·知母对于实验性Ⅱ型糖尿病大鼠的干预 | 第53-54页 |
| ·观测指标及检测方法 | 第54-55页 |
| ·统计学方法 | 第55页 |
| ·实验结果 | 第55-66页 |
| ·STZ剂量的选择 | 第55页 |
| ·给药剂量的选择 | 第55页 |
| ·造模实验结果及分析 | 第55-61页 |
| ·药物干预实验结果及分析 | 第61-66页 |
| ·实验讨论 | 第66-70页 |
| ·高糖高脂饮食加STZ诱导实验性T2DM模型的评价 | 第66-69页 |
| ·阳性药物罗格列酮的评价 | 第69页 |
| ·知母对T2DM 大鼠糖代谢的影响 | 第69-70页 |
| ·本章小结 | 第70-71页 |
| 第四章 实验性T2DM糖尿病大鼠尿液标本代谢组学研究 | 第71-107页 |
| ·引言 | 第71-72页 |
| ·实验材料 | 第72-73页 |
| ·主要实验药品及试剂 | 第72页 |
| ·主要仪器和设备 | 第72-73页 |
| ·实验对象 | 第73页 |
| ·实验方法 | 第73-75页 |
| ·样品的采集 | 第73页 |
| ·样品的制备 | 第73页 |
| ·样品分析条件 | 第73-74页 |
| ·数据预处理及数据分型 | 第74-75页 |
| ·数据分型及潜在标志物的筛选 | 第75页 |
| ·模型复制的代谢组学研究结果与讨论 | 第75-93页 |
| ·样品信息 | 第75页 |
| ·原始图谱数据 | 第75-77页 |
| ·数据分析及结果讨论 | 第77-93页 |
| ·药物干预后的代谢组学实验结果与讨论 | 第93-105页 |
| ·样品信息 | 第93页 |
| ·原始图谱数据 | 第93-96页 |
| ·数据分析结果及讨论 | 第96-105页 |
| ·本章小结 | 第105-107页 |
| 第五章 结论、创新点与展望 | 第107-110页 |
| ·研究成果 | 第107-108页 |
| ·知母醇提物的成分分析 | 第107页 |
| ·T2DM大鼠模型的复制及知母提取物的药效研究 | 第107页 |
| ·T2DM大鼠模型及其药物干预的初步代谢组学研究 | 第107-108页 |
| ·创新性 | 第108页 |
| ·展望 | 第108-110页 |
| 参考文献 | 第110-119页 |
| 攻读硕士期间发表的论文 | 第119-120页 |
| 致谢 | 第120页 |
