| 致谢 | 第1-9页 |
| 缩略语表 | 第9-10页 |
| 摘要 | 第10-12页 |
| ABSTRACT | 第12-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-27页 |
| 引言 | 第13页 |
| 1 根毛的发生发育 | 第13-17页 |
| ·定向分化 | 第14-15页 |
| ·根毛的起始 | 第15-16页 |
| ·尖端生长 | 第16-17页 |
| 2 影响根毛发生发育的因素 | 第17-18页 |
| ·营养条件和激素对根毛的影响 | 第17-18页 |
| ·pH和活性氧(ROS)对根毛的影响: | 第18页 |
| 3 细胞壁与根毛的发生发育 | 第18-23页 |
| ·植物细胞壁的结构和组成 | 第19-20页 |
| ·细胞壁与根毛的发生发育 | 第20-21页 |
| ·木葡聚糖与根毛的发生发育 | 第21-23页 |
| 4 逆转座子TOS17的特点 | 第23-27页 |
| ·逆转座子的特点 | 第23-24页 |
| ·逆转座子TOS17的结构 | 第24页 |
| ·逆转座子TOS17的特点 | 第24-25页 |
| ·逆转座子TOS17的用途 | 第25-27页 |
| 第二章 突变体KSRH2的表型分析及回复 | 第27-40页 |
| 1.材料 | 第27页 |
| 2 方法 | 第27-33页 |
| ·水稻生长条件及突变体表型观察 | 第27-29页 |
| ·水稻根系的半超薄切片 | 第29页 |
| ·OsXXT1基因超表达载体的构建 | 第29-30页 |
| ·农杆菌介导的水稻(籼稻)转化 | 第30-32页 |
| ·半定量RT-PCR分析 | 第32-33页 |
| 3 结果与分析 | 第33-38页 |
| ·ksrh2突变体水培条件表型鉴定 | 第33-34页 |
| ·ksrh2突变体根毛对激素的反应 | 第34页 |
| ·ksrh2突变体在不同pH条件下的表型观察 | 第34-36页 |
| ·OsXXT1基因功能互补验证 | 第36-38页 |
| 4 讨论 | 第38-40页 |
| 第三章 OSXXT1基因的表达分析 | 第40-46页 |
| 1 材料 | 第40页 |
| 2 方法 | 第40-42页 |
| ·OsXXT1 Promoter:Gus载体的构建 | 第40-41页 |
| ·Genevestigator分析木葡聚糖转移酶基因的表达 | 第41页 |
| ·农杆菌介导的水稻转基因 | 第41页 |
| ·转基因水稻的液体培养 | 第41页 |
| ·GUS染色及显微观察 | 第41页 |
| ·半超薄组织切片 | 第41-42页 |
| 3 结果与分析 | 第42-44页 |
| ·水稻木葡聚糖糖基转移酶基因家族的表达 | 第42页 |
| ·GUS组织染色结果 | 第42-44页 |
| ·GUS染色根组织的切片分析 | 第44页 |
| 4 讨论 | 第44-46页 |
| 第四章 逆转座子TOS17的转座特性分析 | 第46-53页 |
| 1 材料 | 第46页 |
| 2 方法 | 第46-49页 |
| ·水稻组织培养 | 第46页 |
| ·CTAB法提取水稻基因组DNA | 第46-47页 |
| ·Southern杂交 | 第47页 |
| ·半定量RT-PCR分析 | 第47-48页 |
| ·愈伤组织的悬浮培养 | 第48页 |
| ·实时定量PCR(RT-qPCR)检测拷贝 | 第48-49页 |
| 3 结果与分析 | 第49-51页 |
| ·检测TOS17在石狩白毛中的拷贝数 | 第49页 |
| ·TOS17在愈伤培养过程中被激活 | 第49-50页 |
| ·定量PCR参数评估 | 第50-51页 |
| ·TOS17拷贝数随组培时间增长而增加 | 第51页 |
| 4 讨论 | 第51-53页 |
| 参考文献 | 第53-60页 |