| 中文摘要 | 第12-13页 |
| ABSTRACT | 第13-14页 |
| 第一章 绪论 | 第15-37页 |
| 1.1 光电化学生物传感器 | 第15-18页 |
| 1.1.1 光电化学生物传感器的原理 | 第15-16页 |
| 1.1.2 光电化学生物传感器的分类 | 第16-17页 |
| 1.1.3 光电化学生物传感器的设计思路 | 第17-18页 |
| 1.2 量子点简介 | 第18-25页 |
| 1.2.1 量子点的主要性质 | 第18-19页 |
| 1.2.2 量子点的制备 | 第19-21页 |
| 1.2.3 量子点与生物分子的偶联 | 第21-25页 |
| 1.3 镉基量子点在光电化学生物传感器中的应用 | 第25-35页 |
| 1.3.1 酶传感器中的应用 | 第25-28页 |
| 1.3.2 DNA传感器中的应用 | 第28-31页 |
| 1.3.3 免疫传感器中的应用 | 第31-33页 |
| 1.3.4 细胞传感器中的应用 | 第33-35页 |
| 1.4 论文研究的内容及创新性 | 第35-37页 |
| 1.4.1 研究内容 | 第35页 |
| 1.4.2 创新性 | 第35-37页 |
| 第二章 基于CdS量子点的光电化学免疫传感器用于癌胚抗原的检测 | 第37-47页 |
| 2.1 引言 | 第37-38页 |
| 2.2 实验部分 | 第38-40页 |
| 2.2.1 实验药品 | 第38-39页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第39页 |
| 2.2.3 合成DMSA-CdSQDs | 第39页 |
| 2.2.4 CuONPs标记二次抗体 | 第39页 |
| 2.2.5 固定一次抗体并与抗原反应 | 第39-40页 |
| 2.2.6 电极的修饰及光电化学检测 | 第40页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第40-46页 |
| 2.3.1 CdSQDs和CuONPs的表征 | 第40页 |
| 2.3.2 CuONPs标记二次抗体的表征 | 第40-41页 |
| 2.3.3 光电化学方法检测CEA的机理 | 第41-42页 |
| 2.3.4 实验条件优化 | 第42-43页 |
| 2.3.5 CEA的检测 | 第43-44页 |
| 2.3.6 光电化学免疫传感的重现性和稳定性 | 第44-45页 |
| 2.3.7 传感器的选择性 | 第45页 |
| 2.3.8 实际样品检测 | 第45-46页 |
| 2.4 小结 | 第46-47页 |
| 第三章 基于CdTe量子点标记DNA组装放大的光电化学传感器 | 第47-57页 |
| 3.1 引言 | 第47-49页 |
| 3.2 实验部分 | 第49-51页 |
| 3.2.1 实验药品 | 第49-50页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第50页 |
| 3.2.3 CdTeQDs与DNA结合 | 第50页 |
| 3.2.4 聚丙烯酰胺凝胶电泳和考马斯亮蓝分析 | 第50页 |
| 3.2.5 功能性探针的制备 | 第50-51页 |
| 3.2.6 检测目标DNA | 第51页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第51-56页 |
| 3.3.1 光电传感机理 | 第51页 |
| 3.3.2 CdTeQDs的表征 | 第51-52页 |
| 3.3.3 CdTeQDs标记DNA的表征 | 第52-53页 |
| 3.3.4 非酶促循环放大的验证 | 第53页 |
| 3.3.5 PEC传感条件的优化 | 第53-55页 |
| 3.3.6 目标DNA的检测 | 第55页 |
| 3.3.7 传感器的选择性 | 第55-56页 |
| 3.4 结论 | 第56-57页 |
| 第四章 总结与展望 | 第57-59页 |
| 参考文献 | 第59-71页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 个人简况及联系方式 | 第73-74页 |