中文摘要 | 第10-13页 |
英文摘要 | 第13-16页 |
本论文主要创新点 | 第17-18页 |
第一章 绪论 | 第18-46页 |
§1.1 DNA组装 | 第18-19页 |
1.1.1 DNA组装概述 | 第18页 |
1.1.2 DNA | 第18-19页 |
§1.2 免疫分析 | 第19-21页 |
1.2.1 概述 | 第19页 |
1.2.2 抗原 | 第19-20页 |
1.2.3 抗体 | 第20页 |
1.2.4 免疫传感器 | 第20-21页 |
1.2.5 电化学免疫分析 | 第21页 |
§1.3 邻位诱导DNA动态组装免疫分析 | 第21-26页 |
1.3.1 邻位诱导DNA连接分析 | 第22-23页 |
1.3.2 邻位诱导DNA延伸分析(PEA) | 第23页 |
1.3.3 邻位诱导DNA组装分析 | 第23-26页 |
§1.4 DNA结构组装 | 第26-30页 |
1.4.1 基于DNA“tile”的纳米结构 | 第26-27页 |
1.4.2 DNA折纸技术 | 第27-28页 |
1.4.3 DNA纳米管 | 第28-29页 |
1.4.4 DNA纳米结构用于药物运载 | 第29-30页 |
§1.5 siRNA及其运载 | 第30-36页 |
1.5.1 siRNA及其干扰 | 第31-32页 |
1.5.2 基于脂质体的运载系统 | 第32页 |
1.5.3 基于纳米材料的运载系统 | 第32-33页 |
1.5.4 基于核酸结构的运载系统 | 第33-34页 |
1.5.5 siRNA的靶向运载 | 第34-36页 |
§1.6 本论文的出发点和主要研究工作 | 第36-37页 |
参考文献 | 第37-46页 |
第二章 邻位诱导比率电化学免疫分析 | 第46-58页 |
§2.1 引言 | 第46-48页 |
§2.2 实验部分 | 第48-50页 |
2.2.1 试剂和材料 | 第48页 |
2.2.2 实验仪器 | 第48-49页 |
2.2.3 DNA-抗体偶联物的制备 | 第49页 |
2.2.4 比率电化学免疫传感器的制备 | 第49页 |
2.2.5 检测步骤 | 第49页 |
2.2.6 凝胶电泳分析 | 第49-50页 |
§2.3 结果与讨论 | 第50-54页 |
2.3.1 比率电化学邻位分析的表征 | 第50-51页 |
2.3.2 比率电化学邻位分析的可行性 | 第51-52页 |
2.3.3 检测条件优化 | 第52页 |
2.3.4 分析性能 | 第52-53页 |
2.3.5 血清样品检测 | 第53-54页 |
§2.4 结论 | 第54页 |
参考文献 | 第54-58页 |
第三章 免疫反应诱导DNA组装的比率电化学分析 | 第58-69页 |
§3.1 引言 | 第58-60页 |
§3.2 实验部分 | 第60-62页 |
3.2.1 试剂和材料 | 第60-61页 |
3.2.2 实验仪器 | 第61页 |
3.2.3 制备MB-DNA1-Ab1和DNA2-Ab2探针 | 第61页 |
3.2.4 比率电化学免疫传感器的制备 | 第61页 |
3.2.5 检测步骤 | 第61-62页 |
§3.3 结果与讨论 | 第62-65页 |
3.3.1 比率电化学免疫分析的可行性 | 第62-63页 |
3.3.2 检测条件优化 | 第63-64页 |
3.3.3 分析性能 | 第64-65页 |
3.3.4 血清样品检测 | 第65页 |
§3.4 结论 | 第65-66页 |
参考文献 | 第66-69页 |
第四章 靶驱动三探针组装DNA酶电化学免疫分析 | 第69-82页 |
§4.1 引言 | 第69-71页 |
§4.2 实验部分 | 第71-73页 |
4.2.1 试剂和材料 | 第71-72页 |
4.2.2 实验仪器 | 第72页 |
4.2.3 制备DNA-Abs | 第72-73页 |
4.2.4 电化学生物传感器的制备 | 第73页 |
4.2.5 检测步骤 | 第73页 |
§4.3 结果与讨论 | 第73-79页 |
4.3.1 3-EPI的表征 | 第73-74页 |
4.3.2 检测条件优化 | 第74-75页 |
4.3.3 检测条件优化 | 第75-77页 |
4.3.4 分析性能 | 第77-78页 |
4.3.5 重现性和精密度 | 第78页 |
4.3.6 血清样品检测 | 第78-79页 |
§4.4 结论 | 第79页 |
参考文献 | 第79-82页 |
第五章 邻位杂交调控DNA生物门高灵敏电化学免疫分析 | 第82-96页 |
§5.1 引言 | 第82-83页 |
§5.2 实验部分 | 第83-86页 |
5.2.1 试剂和材料 | 第83-85页 |
5.2.2 实验仪器 | 第85页 |
5.2.3 制备MSN | 第85页 |
5.2.4 DNA-抗体偶联物的制备 | 第85-86页 |
5.2.5 检测步骤 | 第86页 |
5.2.6 凝胶电泳分析 | 第86页 |
§5.3 结果与讨论 | 第86-93页 |
5.3.1 MSN的表征 | 第86-87页 |
5.3.2 邻位杂交控制DNA生物门的可行性 | 第87-89页 |
5.3.3 检测条件优化 | 第89-91页 |
5.3.4 分析性能 | 第91-92页 |
5.3.5 血清样品检测 | 第92-93页 |
§5.4 结论 | 第93页 |
参考文献 | 第93-96页 |
第六章 结构开关控制“智能钥匙”细胞亚型特异性siRNA载运 | 第96-116页 |
§6.1 引言 | 第96-98页 |
§6.2 实验部分 | 第98-104页 |
6.2.1 试剂和材料 | 第98-99页 |
6.2.2 实验仪器 | 第99-100页 |
6.2.3 DNA环的合成 | 第100页 |
6.2.4 制备DNA支架 | 第100页 |
6.2.5 测量DNA支架浓度 | 第100-101页 |
6.2.6 核酸纳米载体(ONV)合成 | 第101页 |
6.2.7 凝胶电泳分析 | 第101页 |
6.2.8 siRNA-ONV血清稳定性实验 | 第101页 |
6.2.9 siRNA-ONV热稳定性实验 | 第101页 |
6.2.10 细胞培养 | 第101-102页 |
6.2.11 共聚焦荧光成像和流式细胞仪分析 | 第102页 |
6.2.12 共定位分析 | 第102页 |
6.2.13 “智能钥匙”双参数运载选择性实验 | 第102页 |
6.2.14 Cy3-siRNA-ONV细胞内吞途径研究 | 第102-103页 |
6.2.15 细胞毒性和增殖实验 | 第103页 |
6.2.16 基因干扰效果实验 | 第103页 |
6.2.17 细胞增殖和凋亡实验 | 第103-104页 |
§6.3 结果与讨论 | 第104-113页 |
6.3.1 siRNA-ONV凝胶电泳表征 | 第104-105页 |
6.3.2 “智能钥匙”双参数控制可行性 | 第105页 |
6.3.3 siRNA-ONV稳定性实验 | 第105-106页 |
6.3.4 适体可行性验证 | 第106-107页 |
6.3.5 “智能钥匙”双参数控制siRNA载运的可行性 | 第107-108页 |
6.3.6 “智能钥匙”双参数控制的选择性 | 第108-109页 |
6.3.7 Cy3/Cy5-siRNA-ONV共定位分析 | 第109-110页 |
6.3.8 Cy3-siRNA-ONV内吞途径研究 | 第110-111页 |
6.3.9 细胞毒性实验 | 第111页 |
6.3.10 基因干扰效果分析 | 第111-112页 |
6.3.11 细胞增殖和凋亡实验 | 第112-113页 |
§6.4 结论 | 第113页 |
参考文献 | 第113-116页 |
附录 | 第116-117页 |
致谢 | 第117-118页 |