| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 英文缩写词简表 | 第10-11页 |
| 第1章 绪论 | 第11-19页 |
| 1.1 蛛毒素受体Latrophilin研究现状 | 第11-14页 |
| 1.1.1 Latrophilin的鉴定、分类以及结构分析 | 第11-12页 |
| 1.1.2 Latrophilin的功能研究 | 第12-14页 |
| 1.2 昆虫杀虫剂抗性代谢的研究进展 | 第14-17页 |
| 1.2.1 杀虫剂抗药性及其抗性机制的研究 | 第14-15页 |
| 1.2.2 昆虫OBPs和CSPs的研究进展 | 第15-16页 |
| 1.2.3 昆虫CYP450s的研究进展 | 第16-17页 |
| 1.3 模式生物-赤拟谷盗简介 | 第17-18页 |
| 1.4 本研究的目的及意义 | 第18-19页 |
| 第2章 赤拟谷盗Latrophilin下游抗性基因的筛选及其调控关系 | 第19-36页 |
| 2.1 引言 | 第19页 |
| 2.2 实验仪器、材料和试剂 | 第19-20页 |
| 2.2.1 实验仪器 | 第19页 |
| 2.2.2 实验材料 | 第19-20页 |
| 2.2.3 实验药品与试剂 | 第20页 |
| 2.3 实验方法 | 第20-28页 |
| 2.3.1 缓冲液的配制 | 第20页 |
| 2.3.2 Tclph的双链RNA(double-strand RNA,dsRNA)的合成 | 第20-22页 |
| 2.3.3 Tclph的dsRNA的注射 | 第22-24页 |
| 2.3.4 总RNA抽提 | 第24页 |
| 2.3.5 cDNA的合成 | 第24-26页 |
| 2.3.6 qRT-PCR检测基因表达水平 | 第26-27页 |
| 2.3.7 杀虫剂处理实验 | 第27页 |
| 2.3.8 数据处理 | 第27-28页 |
| 2.4 结果 | 第28-35页 |
| 2.4.1 干扰Tclph影响杀虫剂转运以及杀虫剂代谢相关基因的表达 | 第28-30页 |
| 2.4.2 Tclph通过平衡调控TcCSP7和TcOBPC01的表达参与杀虫剂抗性 | 第30页 |
| 2.4.3 Tclph通过调控TcCYP4BN1和TcCYP6BQ11的表达参与杀虫剂抗性 | 第30-35页 |
| 2.5 讨论 | 第35-36页 |
| 第3章 赤拟谷盗Latrophilin下游抗性基因的功能分析 | 第36-58页 |
| 3.1 引言 | 第36页 |
| 3.2 实验材料、仪器及试剂 | 第36-37页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第36-37页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第37页 |
| 3.2.3 实验药品与试剂 | 第37页 |
| 3.3 实验方法 | 第37-46页 |
| 3.3.1 总RNA抽提 | 第37-38页 |
| 3.3.2 cDNA的合成 | 第38-40页 |
| 3.3.3 各个基因不同发育时期、组织表达模式分析 | 第40-41页 |
| 3.3.4 杀虫剂诱导分析 | 第41-42页 |
| 3.3.5 RNAi分析 | 第42-45页 |
| 3.3.6 杀虫剂敏感性检测 | 第45页 |
| 3.3.7 数据处理 | 第45-46页 |
| 3.4 结果 | 第46-54页 |
| 3.4.1 TcCSP7、TcOBPC01、TcCYP4BN1和TcCYP6BQ11的时期表达模式分析 | 第46-48页 |
| 3.4.2 TcCSP7、TcOBPC01、TcCYP4BN1和TcCYP6BQ11的组织表达模式分析 | 第48页 |
| 3.4.3 杀虫剂对TcCSP7、TcOBPC01、TcCYP4BN1和TcCYP6BQ11的诱导模式分析 | 第48-50页 |
| 3.4.4 干扰TcCSP7、TcOBPC01、TcCYP4BN1和TcCYP6BQ11干扰效率最大时间点的探索 | 第50-52页 |
| 3.4.5 干扰TcCSP7、TcOBPC01、TcCYP4BN1和TcCYP6BQ11对杀虫剂抗性的影响 | 第52-54页 |
| 3.5 讨论 | 第54-58页 |
| 第4章 结论 | 第58-60页 |
| 参考文献 | 第60-73页 |
| 在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第73-75页 |
| 致谢 | 第75页 |
