| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 第1章 绪论 | 第15-19页 |
| 第2章 耐辐射奇球菌对重金属离子Cu~(2+)和Cr~(6+)吸附作用研究 | 第19-31页 |
| 2.1 材料及仪器设备 | 第19-21页 |
| 2.1.1 实验所用菌株、培养条件 | 第19-20页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第20页 |
| 2.1.3 主要实验仪器 | 第20-21页 |
| 2.1.4 主要生化试剂的配制 | 第21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-22页 |
| 2.2.1 菌株的扩大培养 | 第21页 |
| 2.2.2 影响耐辐射奇球菌对Cu~(2+)和Cr~(6+)吸附的因素 | 第21-22页 |
| 2.2.3 干菌体的制备 | 第22页 |
| 2.3 结果及分析 | 第22-30页 |
| 2.3.1 耐辐射奇球菌对Cu~(2+)和Cr~(6+)吸附的标准曲线 | 第22-23页 |
| 2.3.2 耐辐射奇球菌对Cu~(2+)和Cr~(6+)吸附作用的影响因素 | 第23-26页 |
| 2.3.3 耐辐射奇球菌对Cu~(2+)和Cr~(6+)吸附的红外光谱分析 | 第26-27页 |
| 2.3.4 耐辐射奇球菌对Cu~(2+)和Cr~(6+)吸附的能谱仪(EDS)分析 | 第27-29页 |
| 2.3.5 γ辐照条件下耐辐射奇球菌和大肠杆菌对Cu~(2+)和Cr~(6+)吸附率比较 | 第29-30页 |
| 2.4 本章小结 | 第30-31页 |
| 第3章 F~-和NO_3~-共存下耐辐射奇球菌对铀的吸附行为研究 | 第31-43页 |
| 3.1 材料及仪器设备 | 第32-34页 |
| 3.1.1 实验所用菌株、培养条件 | 第32页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第32-33页 |
| 3.1.3 主要实验仪器 | 第33页 |
| 3.1.4 主要生化试剂的配制 | 第33-34页 |
| 3.2 实验方法 | 第34-35页 |
| 3.2.1 菌株的扩大培养 | 第34页 |
| 3.2.2 F~-和NO_3~-对耐辐射奇球菌的生长抑制作用 | 第34页 |
| 3.2.3 F~-和NO_3~-共存下影响耐辐射奇球菌对铀吸附的因素 | 第34-35页 |
| 3.2.4 干菌体的制备 | 第35页 |
| 3.3 结果及分析 | 第35-41页 |
| 3.3.1 F~-和NO_3~-对耐辐射奇球菌的生长抑制作用 | 第35-36页 |
| 3.3.2 耐辐射奇球菌对铀吸附的标准曲线 | 第36-37页 |
| 3.3.3 F~-和NO_3~-共存下影响耐辐射奇球菌对铀吸附的因素 | 第37-40页 |
| 3.3.4 耐辐射奇球菌对铀吸附的红外光谱分析 | 第40-41页 |
| 3.4 本章小结 | 第41-43页 |
| 第4章 构建含硫酸盐还原菌dsrA基因的基因工程载体 | 第43-56页 |
| 4.1 材料及仪器设备 | 第44-45页 |
| 4.1.1 实验所用菌株、培养条件 | 第44页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第44-45页 |
| 4.1.3 主要实验仪器 | 第45页 |
| 4.2 实验方法及步骤 | 第45-51页 |
| 4.2.1 硫酸盐还原菌(SRB)的培养 | 第45-46页 |
| 4.2.2 硫酸盐还原菌(SRB)基因组DNA的提取 | 第46-47页 |
| 4.2.3 DsrA目的基因的PCR | 第47-48页 |
| 4.2.4 载体的酶切 | 第48-49页 |
| 4.2.5 大肠杆菌感受态细胞的制备 | 第49-50页 |
| 4.2.6 大肠杆菌细胞的转化 | 第50页 |
| 4.2.7 菌落PCR鉴定 | 第50-51页 |
| 4.3 实验结果 | 第51-54页 |
| 4.3.1 硫酸盐还原菌(SRB)的培养结果 | 第51页 |
| 4.3.2 硫酸盐还原菌(SRB)基因组DNA的提取结果 | 第51-52页 |
| 4.3.3 dsrA目的基因的PCR | 第52页 |
| 4.3.4 dsrA目的基因的测序及Blast比对结果 | 第52-53页 |
| 4.3.5 载体pRADK-DsrA的鉴定 | 第53-54页 |
| 4.4 本章小结 | 第54-56页 |
| 第五章 讨论 | 第56-60页 |
| 第六章 结论 | 第60-62页 |
| 参考文献 | 第62-70页 |
| 综述 | 第70-78页 |
| 参考文献 | 第74-78页 |
| 作者攻读学位期间的科研成果 | 第78-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
