| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5-8页 |
| 第一部分 文献综述 | 第12-22页 |
| 1 抑郁的神经营养因子学说 | 第12-18页 |
| 1.1 神经营养因子与抑郁的关系 | 第12-13页 |
| 1.2 VEGF与抑郁 | 第13-18页 |
| 1.2.1 海马神经发生 | 第14-15页 |
| 1.2.2 VEGF促进海马神经发生 | 第15页 |
| 1.2.3 VEGF与抑郁 | 第15-18页 |
| 2 学习记忆 | 第18-22页 |
| 2.1 概述和分类 | 第18-20页 |
| 2.2 学习记忆与海马 | 第20-21页 |
| 2.3 抑郁引发学习记忆能力的改变 | 第21-22页 |
| 第二部分 实验研究 | 第22-53页 |
| 1 前言 | 第22-23页 |
| 2 实验材料与方法 | 第23-36页 |
| 2.1 实验对象 | 第23页 |
| 2.2 实验材料 | 第23-24页 |
| 2.2.1 运动设备 | 第23页 |
| 2.2.2 实验器材 | 第23-24页 |
| 2.2.3 实验试剂 | 第24页 |
| 2.3 实验方法与步骤 | 第24-26页 |
| 2.3.1 动物造模 | 第24页 |
| 2.3.2 CUMS致大鼠抑郁模型 | 第24-25页 |
| 2.3.3 造模及运动干预 | 第25-26页 |
| 2.4 糖水消耗实验 | 第26-27页 |
| 2.4.1 适应性训练 | 第26页 |
| 2.4.2 正式实验 | 第26-27页 |
| 2.5 Morris水迷宫行为学训练和测试 | 第27-28页 |
| 2.5.1 定位航行实验 | 第27-28页 |
| 2.5.2 空间探索实验 | 第28页 |
| 2.6 动物取材及样本处理 | 第28页 |
| 2.7 主要仪器设备 | 第28-29页 |
| 2.8 ELISA检测大鼠脑内5-HT含量 | 第29-30页 |
| 2.9 Real-timePCR检测海马VEGFmRNA的表达 | 第30-33页 |
| 2.9.1 提取海马RNA | 第30页 |
| 2.9.2 RNA完整性和纯度鉴定 | 第30-31页 |
| 2.9.3 RT-PCR检测VEGFmRNA表达 | 第31-32页 |
| 2.9.4 结果处理 | 第32-33页 |
| 2.10 检测海马VEGF蛋白表达 | 第33-35页 |
| 2.10.1 组织中总蛋白的提取 | 第33页 |
| 2.10.2 VEGF蛋白含量的测定 | 第33-34页 |
| 2.10.3 SDS-PAGE电泳 | 第34页 |
| 2.10.4 蛋白质转印 | 第34页 |
| 2.10.5 免疫反应 | 第34-35页 |
| 2.10.6 内参免疫印迹 | 第35页 |
| 2.10.7 灰度值分析 | 第35页 |
| 2.11 HE染色观察大鼠海马形态结构 | 第35-36页 |
| 2.12 免疫荧光检测海马VEGF表达 | 第36页 |
| 2.13 数据处理 | 第36页 |
| 3 实验结果 | 第36-46页 |
| 3.1 一般状态 | 第36-37页 |
| 3.2 大鼠糖水消耗实验结果 | 第37-38页 |
| 3.3 大鼠全脑5-HT测定结果 | 第38-39页 |
| 3.4 Morris水迷宫行为学测试结果 | 第39-41页 |
| 3.4.1 定位航行实验数据分析 | 第39-40页 |
| 3.4.2 空间探索实验数据分析 | 第40-41页 |
| 3.5 Real-timePCR检测海马VEGFmRNA表达量 | 第41-42页 |
| 3.6 WesternBlotting检测海马VEGF蛋白表达量 | 第42-43页 |
| 3.7 HE染色观察海马神经细胞形态结构 | 第43-44页 |
| 3.8 免疫荧光观测海马VEGF蛋白表达 | 第44-46页 |
| 3.8.1 海马VEGF蛋白表达免疫荧光染色 | 第44-45页 |
| 3.8.2 海马VEGF蛋白表达免疫荧光染色结果 | 第45-46页 |
| 4 讨论与分析 | 第46-52页 |
| 4.1 大鼠抑郁模型验证 | 第46-48页 |
| 4.2 不同时期有氧运动对大鼠空间学习记忆能力的影响 | 第48-50页 |
| 4.3 不同时期有氧运动对大鼠海马VEGF表达的影响 | 第50-52页 |
| 5 结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-58页 |
| 致谢 | 第58页 |
