| 摘要 | 第2-4页 |
| abstract | 第4-5页 |
| 引言 | 第8-11页 |
| 材料与方法 | 第11-22页 |
| 1 主要试剂和材料 | 第11-12页 |
| 2 细胞系与实验动物 | 第12-13页 |
| 3 主要仪器设备 | 第13页 |
| 4 实验方法 | 第13-22页 |
| 4.1 细胞培养 | 第13-14页 |
| 4.2 MTT实验检测细胞的增殖能力 | 第14-15页 |
| 4.3 划痕实验检测细胞的迁移能力 | 第15页 |
| 4.4 细胞转染实验下调CYGB的表达 | 第15-16页 |
| 4.5 实时荧光定量PCR实验检测CYGB的mRNA表达水平 | 第16-18页 |
| 4.6 WesternBlot实验检测蛋白表达水平 | 第18-20页 |
| 4.7 动物实验 | 第20页 |
| 4.8 主要试剂配制 | 第20-21页 |
| 4.9 统计学分析 | 第21-22页 |
| 结果 | 第22-36页 |
| 1 FL118有效抑制卵巢癌ES-2和SK-O-V3细胞的增殖能力 | 第22-23页 |
| 2 FL118有效抑制卵巢癌ES-2和SK-O-V3细胞的迁移能力 | 第23-25页 |
| 3 在卵巢癌ES-2和SK-O-V3细胞中,FL118能上调CYGB的表达水平 | 第25-27页 |
| 4 在卵巢癌ES-2和SK-O-V3细胞中,CYGB介导FL118的抗肿瘤效应 | 第27-30页 |
| 5 在卵巢癌ES-2和SK-O-V3细胞中,FL118能够抑制PI3K/AKT/mTOR信号通路的激活,以及影响VimentinandE-cadherin蛋白的表达水平 | 第30-31页 |
| 6 动物实验中FL118比拓扑替康的抗肿瘤活性更强,且能够上调CYGB的表达 | 第31-36页 |
| 讨论 | 第36-38页 |
| 结论 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-42页 |
| 综述 | 第42-53页 |
| 综述参考文献 | 第49-53页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第53-54页 |
| 缩略词表 | 第54-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
