| 摘要 | 第2-3页 |
| ABSTRACT | 第3页 |
| 引言 | 第6-7页 |
| 第一章 材料与方法 | 第7-14页 |
| 1.1 实验动物 | 第7页 |
| 1.2 主要仪器、试剂和抗体 | 第7-9页 |
| 1.2.1 主要仪器 | 第7页 |
| 1.2.2 主要试剂 | 第7-8页 |
| 1.2.3 主要抗体 | 第8页 |
| 1.2.4 常用液体的配制 | 第8-9页 |
| 1.3 实验方法 | 第9-13页 |
| 1.3.1 RNA转染技术敲除大鼠NLRP3及caspase-1 | 第9页 |
| 1.3.2 大鼠杏仁核电刺激SE模型的制备 | 第9-10页 |
| 1.3.3 SRS的视频监测 | 第10页 |
| 1.3.4 脑组织样本准备 | 第10页 |
| 1.3.5 免疫蛋白印记( Western blot) 检测海马内蛋白表达 | 第10-11页 |
| 1.3.6 RT-PCR检测大鼠海马的NLＲP3和caspase-1 的mRNA水平 | 第11页 |
| 1.3.7 ELISA法检测癫痫大鼠海马组织中IL-1β和IL-18的含量 | 第11-12页 |
| 1.3.8 海马神经元细胞尼氏染色法 | 第12页 |
| 1.3.9 海马神经元细胞TUNEL染色法 | 第12页 |
| 1.3.10 免疫荧光 | 第12页 |
| 1.3.11 动物分组 | 第12-13页 |
| 1.4 统计学处理 | 第13-14页 |
| 第二章 结果 | 第14-22页 |
| 2.1 SE大鼠海马组织Cleaved IL-1β, NLRP3和cleaved caspase-1 等蛋白表达升高 | 第14-15页 |
| 2.2 运用非病毒RNA转染技术敲除NLRP3基因降低SE大鼠海马组织的炎症细胞因子和cleaved caspase-1 的表达 | 第15-17页 |
| 2.3 运用非病毒RNA转染技术敲除NLRP3基因缓解大鼠SE后自发性反复发作的发展和严重程度 | 第17-18页 |
| 2.4 运用非病毒RNA转染技术敲除NLRP3基因减少海马神经元的丢失 | 第18-20页 |
| 2.5 运用非病毒RNA转染技术敲除caspase-1 基因缓解神经炎症，SE后自发性反复发作和海马神经元丢失 | 第20-22页 |
| 第三章 讨论 | 第22-24页 |
| 结论 | 第24-25页 |
| 参考文献 | 第25-28页 |
| 综述 | 第28-35页 |
| 综述的参考文献 | 第32-35页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第35-37页 |
| 致谢 | 第37-38页 |
