摘要 | 第12-15页 |
ABSTRACT | 第15-19页 |
缩写符号 | 第20-21页 |
第一章 文献综述 | 第21-43页 |
1 β-葡聚糖酶的来源 | 第21-22页 |
2 β-葡聚糖酶的作用底物 | 第22页 |
3 β-葡聚糖酶的结构和作用机理 | 第22-24页 |
4 β-葡聚糖酶的生理生化性质 | 第24页 |
5 β-葡聚糖酶的基因克隆和外源表达的研究 | 第24-28页 |
5.1 β-葡聚糖酶的基因克隆 | 第24-25页 |
5.2 β-葡聚糖酶基因的外源表达 | 第25-28页 |
6 β-葡聚糖酶的蛋白质工程研究 | 第28-33页 |
6.1 构建杂合酶 | 第28-29页 |
6.2 定点突变技术 | 第29页 |
6.3 基因缺失技术 | 第29-30页 |
6.4 定向进化技术 | 第30-33页 |
7 β-葡聚糖酶的应用 | 第33-34页 |
7.1 啤酒工业 | 第33页 |
7.2 饲料工业 | 第33页 |
7.3 制糖工业 | 第33-34页 |
7.4 生物防治 | 第34页 |
8 研究目的、意义及内容 | 第34-36页 |
参考文献 | 第36-43页 |
第二章 产热稳定性β-葡聚糖酶芽孢杆菌的分离和鉴定 | 第43-59页 |
1 材料与方法 | 第43-48页 |
1.1 材料 | 第43-45页 |
1.2 方法 | 第45-48页 |
2 结果与分析 | 第48-53页 |
2.1 产β-葡聚糖酶菌株的筛选 | 第48-50页 |
2.2 菌株YC-9的鉴定 | 第50-53页 |
3 讨论 | 第53页 |
4 本章小结 | 第53-55页 |
参考文献 | 第55-59页 |
第三章 Bacillus altitudinis YC-9产β-葡聚糖酶的分离纯化及其酶学性质的研究 | 第59-77页 |
1 材料与方法 | 第59-63页 |
1.1 材料 | 第59-61页 |
1.2 方法 | 第61-63页 |
2 结果与分析 | 第63-70页 |
2.1 Bacillus altitudinis YC-9的生长曲线和酶生物合成曲线的测定 | 第63-64页 |
2.2 Bacillus altitudinis YC-9产β-葡聚糖酶的分离纯化 | 第64-67页 |
2.3 β-葡聚糖酶酶学性质的研究 | 第67-70页 |
3 讨论 | 第70-71页 |
4 本章小结 | 第71-73页 |
参考文献 | 第73-77页 |
第四章 β-葡聚糖酶基因的克隆表达及重组酶性质研究 | 第77-107页 |
1 材料与方法 | 第77-86页 |
1.1 材料 | 第77-78页 |
1.2 方法 | 第78-86页 |
2 结果与分析 | 第86-101页 |
2.1 Bacillus altitudinis YC-9 β-葡聚糖酶基因的克隆与生物信息学分析 | 第86-88页 |
2.2 Bacillus altitudinis YC-9的β-葡聚糖酶基因的表达 | 第88-91页 |
2.3 重组酶表达条件的优化 | 第91-95页 |
2.4 重组酶表达的SDS-PAGE鉴定 | 第95页 |
2.5 重组β-葡聚糖酶的纯化 | 第95-97页 |
2.6 重组β-葡聚糖酶酶学性质的研究 | 第97-101页 |
3 讨论 | 第101-103页 |
4 本章小结 | 第103-104页 |
参考文献 | 第104-107页 |
第五章 基于易错PCR技术的β-葡聚糖酶基因的定向进化研究 | 第107-127页 |
1 材料与方法 | 第107-111页 |
1.1 材料 | 第107-108页 |
1.2 方法 | 第108-111页 |
2 结果与分析 | 第111-120页 |
2.1 易错PCR反应体系中Mg~(2+)和Mn~(2+)浓度的优化 | 第112-113页 |
2.2 易错PCR介导的β-葡聚糖酶高酶活突变体的高通量筛选 | 第113-115页 |
2.3 突变酶的性质研究 | 第115-117页 |
2.4 突变体Glu-3060的基因及氨基酸序列分析 | 第117-119页 |
2.5 突变酶的三维结构同源模拟及突变位点分析 | 第119-120页 |
3 讨论 | 第120-122页 |
4 本章小结 | 第122-124页 |
参考文献 | 第124-127页 |
全文结论 | 第127-129页 |
论文创新点 | 第129-131页 |
展望 | 第131-133页 |
致谢 | 第133-135页 |
攻读博士期间发表论文及申请专利情况 | 第135页 |