| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第14-26页 |
| 1.1 香蕉 | 第14-16页 |
| 1.1.1 香蕉概述 | 第14页 |
| 1.1.2 香蕉的成分及营养功能 | 第14页 |
| 1.1.3 香蕉的分类 | 第14-15页 |
| 1.1.4 香蕉的成熟度划分 | 第15页 |
| 1.1.5 香蕉的生产发展现状 | 第15-16页 |
| 1.2 低聚糖 | 第16-25页 |
| 1.2.1 低聚糖概述 | 第16-17页 |
| 1.2.2 低聚糖的生理功能 | 第17页 |
| 1.2.3 低聚糖的提取方法 | 第17-20页 |
| 1.2.3.1 溶剂浸提法 | 第17-18页 |
| 1.2.3.2 超声波辅助萃取法 | 第18页 |
| 1.2.3.3 微波辅助萃取法 | 第18-19页 |
| 1.2.3.4 超高压辅助萃取法 | 第19-20页 |
| 1.2.3.5 其他 | 第20页 |
| 1.2.4 低聚糖的分离纯化 | 第20-21页 |
| 1.2.4.1 柱层析分离法 | 第20-21页 |
| 1.2.4.2 膜分离法 | 第21页 |
| 1.2.4.3 分步沉淀法 | 第21页 |
| 1.2.4.4 其他 | 第21页 |
| 1.2.5 低聚糖的结构鉴定 | 第21-24页 |
| 1.2.5.1 质谱法(MS) | 第21-22页 |
| 1.2.5.2 凝胶渗透色谱法(GPC) | 第22页 |
| 1.2.5.3 薄层色谱法(TLC) | 第22页 |
| 1.2.5.4 高效液相色谱法(HPLC) | 第22-23页 |
| 1.2.5.5 气相色谱法(GC) | 第23页 |
| 1.2.5.6 毛细管电泳法(CE) | 第23页 |
| 1.2.5.7 红外光谱法(FTIR) | 第23-24页 |
| 1.2.5.8 核磁共振法(NMR) | 第24页 |
| 1.2.6 低聚糖的应用现状 | 第24-25页 |
| 1.3 本课题研究的目的、意义和研究内容 | 第25-26页 |
| 1.3.1 研究目的和意义 | 第25页 |
| 1.3.2 研究内容 | 第25-26页 |
| 第二章 香蕉低聚糖的提取 | 第26-46页 |
| 2.1 引言 | 第26页 |
| 2.2 实验材料与设备 | 第26-27页 |
| 2.2.1 实验材料及试剂 | 第26页 |
| 2.2.2 试验设备 | 第26-27页 |
| 2.3 实验方法 | 第27-32页 |
| 2.3.1 香蕉低聚糖的提取工艺流程 | 第27页 |
| 2.3.2 溶剂浸提法提取香蕉低聚糖 | 第27-28页 |
| 2.3.2.1 单因素实验 | 第27-28页 |
| 2.3.2.2 正交试验 | 第28页 |
| 2.3.3 超声波法提取香蕉低聚糖 | 第28-29页 |
| 2.3.3.1 单因素实验 | 第28页 |
| 2.3.3.2 正交试验 | 第28-29页 |
| 2.3.4 微波法提取香蕉低聚糖 | 第29-30页 |
| 2.3.4.1 单因素实验 | 第29页 |
| 2.3.4.2 正交试验 | 第29-30页 |
| 2.3.5 超高压法提取香蕉低聚糖 | 第30页 |
| 2.3.6 标准曲线的绘制及香蕉低聚糖得率的测定 | 第30-32页 |
| 2.4 实验结果与讨论 | 第32-44页 |
| 2.4.1 溶剂浸提法提取香蕉低聚糖 | 第32-35页 |
| 2.4.1.1 单因素实验 | 第32-33页 |
| 2.4.1.2 溶剂浸提法的正交试验 | 第33-35页 |
| 2.4.2 超声波法提取香蕉低聚糖 | 第35-38页 |
| 2.4.2.1 单因素实验 | 第35-37页 |
| 2.4.2.2 超声波法的正交试验 | 第37-38页 |
| 2.4.3 微波浸提法提取香蕉低聚糖 | 第38-42页 |
| 2.4.3.1 单因素实验 | 第38-40页 |
| 2.4.3.2 微波法的正交试验 | 第40-42页 |
| 2.4.4 超高压法提取香蕉低聚糖 | 第42-43页 |
| 2.4.4.1 超高压法的正交试验 | 第42-43页 |
| 2.4.5 四种提取方法的 SPSS 差异分析 | 第43-44页 |
| 2.5 本章小结 | 第44-46页 |
| 第三章 香蕉低聚糖含量测定、分离纯化及理化性质研究 | 第46-56页 |
| 3.1 引言 | 第46页 |
| 3.2 实验材料与设备 | 第46-47页 |
| 3.2.1 实验材料与试剂 | 第46-47页 |
| 3.2.3 实验设备 | 第47页 |
| 3.3 实验方法 | 第47-49页 |
| 3.3.1 不同成熟度香蕉低聚糖的含量测定 | 第47-48页 |
| 3.3.2 Sephadex G-25 葡聚糖凝胶分离纯化香蕉低聚糖 | 第48页 |
| 3.3.3 DEAE Sepharose Fast Flow 琼脂糖凝胶分离纯化香蕉低聚糖 | 第48页 |
| 3.3.4 香蕉低聚糖提取液的纯度测定 | 第48-49页 |
| 3.3.5 香蕉低聚糖的理化性质检测 | 第49页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第49-54页 |
| 3.4.1 不同成熟度香蕉低聚糖的含量测定 | 第49-50页 |
| 3.4.2 Sephadex G-25 葡聚糖凝胶分离纯化香蕉低聚糖 | 第50-51页 |
| 3.4.3 DEAE Sepharose Fast Flow 琼脂糖凝胶分离纯化香蕉低聚糖 | 第51-52页 |
| 3.4.4 Sephadex G-25 葡聚糖凝胶分离纯化粉蕉、皇帝蕉低聚糖 | 第52-53页 |
| 3.4.5 香蕉低聚糖的纯度分析 | 第53页 |
| 3.4.6 香蕉低聚糖的理化性质分析 | 第53-54页 |
| 3.5 本章小结 | 第54-56页 |
| 第四章 三个香蕉品种低聚糖的结构鉴定和比较研究 | 第56-84页 |
| 4.1 引言 | 第56页 |
| 4.2 实验材料与设备 | 第56-58页 |
| 4.2.1 实验材料与试剂 | 第56-57页 |
| 4.2.2 试验设备 | 第57-58页 |
| 4.3 实验方法 | 第58-60页 |
| 4.3.1 质谱法测定分子量 | 第58页 |
| 4.3.2 薄层层析法测定单糖组成 | 第58-59页 |
| 4.3.3 高效液相色谱法测定单糖组成 | 第59页 |
| 4.3.4 红外光谱分析 | 第59页 |
| 4.3.5 核磁共振分析 | 第59-60页 |
| 4.4 实验结果与讨论 | 第60-82页 |
| 4.4.1 香牙蕉低聚糖糖分Ⅰ的结构分析 | 第60-69页 |
| 4.4.1.1 质谱(MS)分析 | 第60-61页 |
| 4.4.1.2 薄层层析（TLC）分析 | 第61-62页 |
| 4.4.1.3 高效液相色谱（HPLC）分析 | 第62-66页 |
| 4.4.1.4 红外光谱（IR）分析 | 第66-67页 |
| 4.4.1.5 核磁共振（NMR）分析 | 第67-69页 |
| 4.4.2 粉蕉低聚糖糖分Ⅰ的结构分析 | 第69-76页 |
| 4.4.2.1 质谱（MS）分析 | 第69-70页 |
| 4.4.2.2 薄层层析（TLC）分析 | 第70-71页 |
| 4.4.2.3 高效液相色谱（HPLC）分析 | 第71-73页 |
| 4.4.2.4 红外光谱（IR）分析 | 第73-74页 |
| 4.4.2.5 核磁共振（NMR）分析 | 第74-76页 |
| 4.4.3 皇帝蕉低聚糖糖分Ⅰ的结构分析 | 第76-82页 |
| 4.4.3.1 质谱（MS）分析 | 第76-77页 |
| 4.4.3.2 薄层层析（TLC）分析 | 第77-78页 |
| 4.4.3.3 高效液相色谱（HPLC）分析 | 第78-80页 |
| 4.4.3.4 红外光谱（IR）分析 | 第80-81页 |
| 4.4.3.5 核磁共振（NMR）分析 | 第81-82页 |
| 4.5 结论 | 第82-84页 |
| 结论与展望 | 第84-87页 |
| 一、结论 | 第84-85页 |
| 二、本论文的创新点 | 第85-86页 |
| 三、展望 | 第86-87页 |
| 参考文献 | 第87-94页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第94-95页 |
| 致谢 | 第95-96页 |
| 附件 | 第96页 |
