摘要 | 第5-6页 |
ABSTRACT | 第6-7页 |
缩略语说明 | 第8-9页 |
前言 | 第9-12页 |
实验研究 | 第12-44页 |
1 大鼠视网膜微血管内皮细胞体外高糖缺氧模型的建立 | 第12-15页 |
1.1 材料 | 第12-13页 |
1.1.1 实验细胞 | 第12页 |
1.1.2 主要试剂 | 第12页 |
1.1.3 主要仪器设备 | 第12-13页 |
1.2 实验方法 | 第13-14页 |
1.2.1 细胞传代、培养 | 第13页 |
1.2.2 细胞冻存 | 第13页 |
1.2.3 细胞复苏 | 第13-14页 |
1.2.4 溶液的配制 | 第14页 |
1.2.5 MTT法摸索大鼠视网膜微血管内皮细胞体外高糖缺氧模型建立所需时间 | 第14页 |
1.2.6 统计学方法 | 第14页 |
1.3 结果及分析 | 第14-15页 |
1.3.1 大鼠视网膜微血管内皮细胞形态 | 第14-15页 |
1.3.2 大鼠视网膜微血管内皮细胞鉴定及纯度 | 第15页 |
1.3.3 高糖缺氧模型的建立 | 第15页 |
2 右归丸药物血清对高糖缺氧条件下大鼠视网膜微血管内皮细胞增殖及迁移的影响 | 第15-23页 |
2.1 材料 | 第15-17页 |
2.1.1 实验动物 | 第15-16页 |
2.1.2 细胞及培养 | 第16页 |
2.1.3 实验药物 | 第16页 |
2.1.4 主要实验试剂 | 第16页 |
2.1.5 仪器设备 | 第16-17页 |
2.1.6 溶液的配制 | 第17页 |
2.2 实验方法 | 第17-19页 |
2.2.1 高糖缺氧模型的建立 | 第17页 |
2.2.2 药物血清制备及分组 | 第17-18页 |
2.2.3 MTT法检测右归丸药物血清对大鼠视网膜微血管内皮细胞的增殖 | 第18页 |
2.2.4 Transwell法检测右归丸药物血清对大鼠视网膜微血管内皮细胞的迁移 | 第18-19页 |
2.2.5 统计学方法 | 第19页 |
2.3 实验结果与分析 | 第19-23页 |
2.3.1 右归丸药物血清对大鼠视网膜微血管内皮细胞增殖的影响 | 第19-21页 |
2.3.2 右归丸药物血清对大鼠视网膜微血管内皮细胞迁移的影响 | 第21-23页 |
3 右归丸药物血清对高糖缺氧条件下大鼠视网膜微血管内皮细胞VEGF、VEGFR-2、PI3K、Akt基因及蛋白表达的影响 | 第23-32页 |
3.1 材料与仪器 | 第23-24页 |
3.1.1 细胞及培养 | 第23页 |
3.1.2 实验药物 | 第23页 |
3.1.3 所用试剂 | 第23-24页 |
3.1.4 主要仪器设备 | 第24页 |
3.2 实验方法 | 第24-29页 |
3.2.1 高糖缺氧模型的建立 | 第24页 |
3.2.2 药物血清制备及分组 | 第24页 |
3.2.3 RT-PCR法检测mRNA表达水平 | 第24-27页 |
3.2.4 Western-blot法检测蛋白表达水平 | 第27-28页 |
3.2.5 统计学方法 | 第28-29页 |
3.3 实验结果与分析 | 第29-32页 |
3.3.1 右归丸药物血清对大鼠视网膜微血管内皮细胞相关基因表达水平的影响 | 第29-31页 |
3.3.2 右归丸药物血清对大鼠视网膜微血管内皮细胞相关蛋白表达水平的影响 | 第31-32页 |
4 讨论 | 第32-44页 |
4.1 现代医学对DR的研究认识 | 第32-38页 |
4.1.1 高糖缺氧造成的视网膜病理改变特征 | 第32-34页 |
4.1.2 视网膜微血管内皮细胞损伤在DR形成中的作用 | 第34页 |
4.1.3 VEGF与PDR | 第34-36页 |
4.1.4 PI3K/Akt信号转导通路与PDR | 第36-38页 |
4.2 中医对DR的研究认识及右归丸药物的选择 | 第38-40页 |
4.2.1 DR中医病机及特征 | 第38页 |
4.2.2 右归丸的组方、治法特点及现代药理研究 | 第38-40页 |
4.3 视网膜微血管内皮细胞体外高糖缺氧模型的评价 | 第40-41页 |
4.4 右归丸药物血清对高糖缺氧条件下大鼠视网膜微血管内皮细胞增殖及迁移的影响 | 第41-42页 |
4.5 右归丸药物血清对高糖缺氧条件下大鼠视网膜微血管内皮细胞VEGF/PI3K/Akt信号通路的影响 | 第42-44页 |
结语 | 第44-45页 |
参考文献 | 第45-50页 |
附录 | 第50-52页 |
文献综述 | 第52-59页 |
参考文献 | 第56-59页 |
致谢 | 第59-60页 |
在学期间研究成果 | 第60页 |