| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 目录 | 第11-14页 |
| 中英文对照 | 第14-15页 |
| 绪论 | 第15-17页 |
| 第一章 EPCs分离、培养及鉴定 | 第17-21页 |
| 1 材料 | 第17页 |
| 1.1 主要试剂 | 第17页 |
| 1.2 主要器材 | 第17页 |
| 2 方法 | 第17-19页 |
| 2.1 EPC细胞分离及培养 | 第17-18页 |
| 2.2 免疫荧光鉴定 | 第18-19页 |
| 3 结果 | 第19页 |
| 4 讨论 | 第19-21页 |
| 第二章 EPCs中VDR基因过表达/低表达体系构建及验证 | 第21-35页 |
| 1 材料 | 第21-24页 |
| 1.1 试剂 | 第21-22页 |
| 1.2 溶液配制 | 第22-23页 |
| 1.3 器材 | 第23-24页 |
| 2 方法 | 第24-30页 |
| 2.1 Ad-VDR及Ad-VDR shRNA构建 | 第24-27页 |
| 2.2 EPCs中VDR基因过表达/低表达体系构建、实验分组及验证 | 第27-28页 |
| 2.3 RT-PCR法检测VDR mRNA相对表达量 | 第28-29页 |
| 2.4 WB法检测EPCs中VDR蛋白质表达量 | 第29-30页 |
| 3 结果 | 第30-33页 |
| 3.1 Ad-VDR/Ad-VDR shRNA构建及转染结果 | 第30-32页 |
| 3.2 EPCs中VDR基因过表达/低表达体系验证 | 第32-33页 |
| 4 讨论 | 第33-35页 |
| 第三章 VDR基因对EPCs生物学功能的影响 | 第35-56页 |
| 1 材料 | 第35-36页 |
| 1.1 试剂 | 第35-36页 |
| 1.2 溶液配制 | 第36页 |
| 1.3 器材 | 第36页 |
| 2 方法 | 第36-39页 |
| 2.1 不同浓度Rapamycin对EPCs增殖的影响 | 第36页 |
| 2.2 实验分组 | 第36-37页 |
| 2.3 MTT法检测各组EPCs增殖 | 第37页 |
| 2.4 BrdU法检测各组EPCs增殖 | 第37页 |
| 2.5 FACS检测各组EPCs凋亡 | 第37-38页 |
| 2.6 WB法检测各组EPCs凋亡 | 第38页 |
| 2.7 β-半乳糖苷酶染色法检测各组EPCs衰老 | 第38页 |
| 2.8 FACS检测各组EPCs细胞周期 | 第38页 |
| 2.9 侵袭小室检测各组EPCs迁移 | 第38-39页 |
| 2.10 统计 | 第39页 |
| 3 结果 | 第39-49页 |
| 3.1 Rapamycin对EPCs增殖的影响 | 第39-40页 |
| 3.2 MTT法检测各组EPCs增殖 | 第40-41页 |
| 3.3 BrdU法检测各组EPCs增殖 | 第41-43页 |
| 3.4 FACS检测各组EPCs细胞凋亡 | 第43页 |
| 3.5 WB法检测各组EPCs凋亡 | 第43-45页 |
| 3.6 β-半乳糖苷酶染色法检测各组EPCs衰老 | 第45-46页 |
| 3.7 FACS检测各组EPCs细胞周期 | 第46-47页 |
| 3.8 侵袭小室检测各组EPCs迁移 | 第47-49页 |
| 4 讨论 | 第49-56页 |
| 4.1 Rapamycin作为实验对照的应用 | 第49页 |
| 4.2 VDR基因对EPCs增殖的影响 | 第49-51页 |
| 4.3 VDR基因对EPCs凋亡的影响 | 第51-52页 |
| 4.4 VDR基因对EPCs衰老的影响 | 第52页 |
| 4.5 VDR基因对EPCs细胞周期的影响 | 第52-53页 |
| 4.6 VDR基因对EPCs迁移的影响 | 第53-54页 |
| 4.7 探讨和展望 | 第54-56页 |
| 结论 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-61页 |
| 附录 | 第61-67页 |
| 综述 | 第67-77页 |
| 参考文献 | 第75-77页 |
| 攻读硕士学位期间主要的研究成果目录 | 第77-78页 |
| 致谢 | 第78页 |
