| 摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 英文缩略词表 | 第16-17页 |
| 1 前言 | 第17-19页 |
| 2 材料方法 | 第19-35页 |
| 2.1 实验仪器 | 第19-20页 |
| 2.2 材料 | 第20-23页 |
| 2.2.1 试剂 | 第20-22页 |
| 2.2.2 溶液的配制 | 第22-23页 |
| 2.3 研究方法 | 第23-35页 |
| 2.3.1 研究对象 | 第23页 |
| 2.3.2 资料收集 | 第23-24页 |
| 2.3.3 血样采集及基因组DNA提取 | 第24-25页 |
| 2.3.4 标签SNP的选择 | 第25页 |
| 2.3.5 基因分型方法 | 第25-26页 |
| 2.3.6 引物的设计及限制性内切酶的选择 | 第26页 |
| 2.3.7 PCR扩增及限制性内切酶基因分型 | 第26-27页 |
| 2.3.8 生物学功能的初步探索 | 第27-29页 |
| 2.3.9 293 T细胞培养 | 第29-30页 |
| 2.3.10 细胞转染 | 第30页 |
| 2.3.11 荧光实时定量逆转录聚合酶链反应(qRT-PCR) | 第30-33页 |
| 2.3.11.1 血浆中RNA的提取 | 第30-31页 |
| 2.3.11.2 不同基因型TUSC7相对表达量的检测 | 第31-33页 |
| 2.3.12 数据分析 | 第33-34页 |
| 2.3.13 质量控制 | 第34-35页 |
| 3 结果 | 第35-53页 |
| 3.1 研究对象的一般特征 | 第35-36页 |
| 3.2 基因分型 | 第36-40页 |
| 3.2.1 凝胶电泳结果 | 第36-38页 |
| 3.2.2 SNP 基因型验证 | 第38-40页 |
| 3.3 对照组Hardy-Weinberg平衡检验 | 第40-41页 |
| 3.4 3 个SNPs位点和胃癌遗传易感性的关系 | 第41-43页 |
| 3.5 3 个SNPs位点与胃癌关联性的分层分析 | 第43-46页 |
| 3.6 3 个SNPs位点的单体型分析 | 第46页 |
| 3.7 环境-基因因素交互作用 | 第46-49页 |
| 3.8 3 ’UTR双荧光素酶报告实验结果 | 第49-52页 |
| 3.8.1 TUSC7 rs12494960 位点构建载体凝胶电泳结果 | 第49-50页 |
| 3.8.2 3 ’UTR双荧光素酶载体的测序结果鉴定 | 第50页 |
| 3.8.3 3 'UTR双荧光素酶报告载体质粒的浓度及纯度 | 第50页 |
| 3.8.4 rs12494960C/A变异对miR-133a-3p和lncRNA-TUSC7的结合能力的影响 | 第50-52页 |
| 3.9 不同rs124949460基因型人群血浆中TUSC7的表达量 | 第52-53页 |
| 3.9.1 rs12494960表达的检测 | 第52-53页 |
| 4 讨论 | 第53-57页 |
| 4.1 本研究概述 | 第53-54页 |
| 4.2 TUSC7基因多态性与胃癌 | 第54-55页 |
| 4.3 基因-环境交互作用与胃癌 | 第55页 |
| 4.4 TUSC7的双荧光素酶报告基因实验与胃癌的初步功能研究 | 第55-56页 |
| 4.5 本研究的优点和局限性 | 第56-57页 |
| 5 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-62页 |
| 综述 | 第62-78页 |
| 1.ncRNAs与细胞周期的作用 | 第62-63页 |
| 2 miRNA参与胃癌的发生发展 | 第63页 |
| 3.lncRNAs与胃癌 | 第63-64页 |
| 4.LncRNA和miRNA之间存在双向调控作用 | 第64-65页 |
| 5 在胃癌中lncRNA和miRNA的相互调控作用 | 第65-70页 |
| 5.1 HOTAIR | 第65-66页 |
| 5.2 TUSC7 | 第66-67页 |
| 5.3 H19 | 第67页 |
| 5.4 PVT1 | 第67-68页 |
| 5.5 其他lncRNA和miRNA在胃癌中的相互调控作用 | 第68-70页 |
| 参考文献 | 第70-78页 |
| 个人简历及学术论文发表情况 | 第78-79页 |
| 致谢 | 第79页 |
