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PRMT5在子宫内膜癌中的作用及机制研究

中文摘要第8-11页
ABSTRACT第11-13页
英汉名词对照第14-15页
第一章 绪论第15-20页
第二章 资料与方法第20-39页
    2.1 试剂与仪器第20-23页
        2.1.1 实验试剂第20-22页
        2.1.2 实验仪器第22-23页
        2.1.3 主要溶液配制方法第23页
    2.2 免疫组织化学第23-25页
        2.2.1 病历资料收集第23页
        2.2.2 免疫组化实验步骤第23-25页
        2.2.3 免疫细胞化学实验步骤第25页
    2.3 质粒构建提取与细胞转染第25-27页
        2.3.1 构建质粒第25-27页
        2.3.2 细胞转染步骤第27页
    2.4 Western Blot第27-30页
        2.4.1 实验目的第27-28页
        2.4.2 Western blot实验步骤第28-30页
    2.5 实时定置聚合酶链反应第30-32页
        2.5.1 实验目的第30页
        2.5.2 PCR实验步骤第30-32页
    2.6 免疫共沉淀第32-35页
        2.6.1 实验目的第32页
        2.6.2 免疫共沉淀实验步骤第32-35页
    2.7 雌激素梯度加药实验第35页
        2.7.1 实验目的第35页
        2.7.2 雌激素加药实验步骤第35页
    2.8 细胞功能实验第35-39页
        2.8.1 实验目的第35-36页
        2.8.2 细胞增殖实验CCK-8步骤第36页
        2.8.3 细胞划痕实验步骤第36页
        2.8.4 细胞迁移、侵袭实验步骤第36-37页
        2.8.5 平板克隆实验步骤第37页
        2.8.6 流式细胞术测细胞凋亡步骤第37页
        2.8.7 流式细胞术测细胞周期步骤第37-39页
第三章 实验结果第39-49页
    3.1 PRMT5在子宫内膜样腺癌中表达明显升高第39-40页
    3.2 PRMT5与子宫内膜癌临床病理特点之间的相关性第40页
    3.3 两种细胞株PRMT5表达差异第40-41页
    3.4 细胞株转染PRMT5敲减效率第41-42页
    3.5 敲低PRMT5后对细胞功能的影响第42-46页
    3.6 PRMT5与增殖凋亡蛋白之间的作用第46页
    3.7 PRMT5促进ER表达第46-47页
    3.8 PRMT5与SRC1和ER形成复合物第47-48页
    3.9 雌激素对PRMT5有抑制作用第48-49页
第四章 讨论第49-56页
第五章 结论第56-57页
附录第57-67页
参考文献第67-75页
致谢第75-77页
攻读学位期间发表的学术论文和参加科研情况第77-78页
附件第78页

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