| 摘要 | 第10-12页 |
| Abstract | 第12-14页 |
| 英语缩略词 | 第15-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-34页 |
| 1 多糖概述 | 第16-31页 |
| 1.1 多糖的概念及分类 | 第16页 |
| 1.1.1 多糖的概念 | 第16页 |
| 1.1.2 多糖的分类 | 第16页 |
| 1.2 多糖的提取 | 第16-18页 |
| 1.2.1 材料的预处理 | 第16页 |
| 1.2.2 提取方法 | 第16-17页 |
| 1.2.3 提取条件的优化 | 第17-18页 |
| 1.3 多糖的纯化 | 第18-23页 |
| 1.3.1 多糖中杂质的去除 | 第18-22页 |
| 1.3.2 多糖的分级 | 第22-23页 |
| 1.4 多糖纯度的测定 | 第23-24页 |
| 1.4.1 凝胶柱过滤法 | 第23-24页 |
| 1.4.2 电泳法 | 第24页 |
| 1.4.3 超离心法 | 第24页 |
| 1.4.4 旋光度法 | 第24页 |
| 1.5 多糖结构的解析 | 第24-28页 |
| 1.5.1 化学分析法 | 第25-26页 |
| 1.5.2 仪器分析法 | 第26-28页 |
| 1.5.3 生物学分析法 | 第28页 |
| 1.6 多糖的生物活性 | 第28-31页 |
| 1.6.1 免疫调节作用 | 第28-29页 |
| 1.6.2 抗肿瘤作用 | 第29页 |
| 1.6.3 抗衰老作用 | 第29-30页 |
| 1.6.4 降血糖作用 | 第30页 |
| 1.6.5 降血脂作用 | 第30-31页 |
| 1.6.6 其它活性 | 第31页 |
| 2 滇重楼概述 | 第31-33页 |
| 2.1 分类地位 | 第31页 |
| 2.2 化学成分 | 第31-32页 |
| 2.3 资源分布与利用状况 | 第32-33页 |
| 2.3.1 野生资源 | 第32页 |
| 2.3.2 人工种植状况 | 第32页 |
| 2.3.3 滇重楼的开发利用 | 第32-33页 |
| 3 本研究的目的和意义 | 第33页 |
| 4 本研究的技术路线 | 第33-34页 |
| 第二章 滇重楼多糖提取工艺的优化 | 第34-53页 |
| 1 材料与方法 | 第34-37页 |
| 1.1 材料与设备 | 第34-35页 |
| 1.1.1 试验材料 | 第34页 |
| 1.1.2 试验试剂 | 第34页 |
| 1.1.3 试验设备 | 第34-35页 |
| 1.2 试验方法 | 第35-37页 |
| 1.2.1 滇重楼多糖含量的测定 | 第35页 |
| 1.2.2 试验设计 | 第35-37页 |
| 2 结果与分析 | 第37-51页 |
| 2.1 PPLPs提取工艺的优化 | 第37-43页 |
| 2.1.1 单因素试验结果分析 | 第37-39页 |
| 2.1.2 PPLPs的CCD优化结果分析 | 第39-42页 |
| 2.1.3 模型的验证 | 第42-43页 |
| 2.2 PPRPs的提取工艺的优化 | 第43-51页 |
| 2.2.1 单因素试验结果分析 | 第43-45页 |
| 2.2.2 PPRPs的CCD优化结果分析 | 第45-50页 |
| 2.2.3 模型的验证 | 第50-51页 |
| 3 讨论与结论 | 第51-53页 |
| 3.1 滇重楼多糖提取和测定方法的选择 | 第51-52页 |
| 3.2 模型的选择与构建 | 第52-53页 |
| 第三章 滇重楼多糖的分离纯化 | 第53-74页 |
| 1 材料与方法 | 第53-60页 |
| 1.1 试验材料 | 第53-54页 |
| 1.1.1 PPLPs的制备 | 第53页 |
| 1.1.2 PPRPs的制备 | 第53-54页 |
| 1.2 试剂与仪器 | 第54页 |
| 1.2.1 试验试剂 | 第54页 |
| 1.2.2 试验设备 | 第54页 |
| 1.3 最佳干燥方法的选择 | 第54-56页 |
| 1.3.1 高温热空气烘干 | 第54页 |
| 1.3.2 室温真空抽干 | 第54页 |
| 1.3.3 真空低温冻干 | 第54-55页 |
| 1.3.4 滇重楼多糖表面结构的观察 | 第55页 |
| 1.3.5 体外抗氧化活性的测定 | 第55-56页 |
| 1.4 滇重楼多糖中蛋白质的去除 | 第56-59页 |
| 1.4.1 蛋白质去除率的测定 | 第57-58页 |
| 1.4.2 滇重楼多糖损失率的测定 | 第58-59页 |
| 1.5 滇重楼多糖的分级纯化 | 第59-60页 |
| 1.5.1 阴离子交换柱层析 | 第59页 |
| 1.5.2 凝胶柱层析 | 第59-60页 |
| 2 结果与分析 | 第60-72页 |
| 2.1 干燥方法对滇重楼多糖的影响 | 第60-66页 |
| 2.1.1 干燥方法对滇重楼多糖表面结构的影响 | 第60-61页 |
| 2.1.2 干燥方法对滇重楼多糖抗氧化活性的影响 | 第61-66页 |
| 2.2 滇重楼多糖中蛋白质的去除 | 第66-69页 |
| 2.2.1 牛血清蛋白标准曲线的绘制 | 第66页 |
| 2.2.2 葡萄糖标准曲线的绘制 | 第66-67页 |
| 2.2.3 最适去蛋白质次数的选择 | 第67-69页 |
| 2.3 滇重楼多糖的分级纯化 | 第69-72页 |
| 2.3.1 DEAE-52 cellulose柱层析 | 第69-70页 |
| 2.3.2 Sephadex G100凝胶柱层析 | 第70-72页 |
| 3 讨论与结论 | 第72-74页 |
| 3.1 干燥方法对滇重楼多糖的影响 | 第72页 |
| 3.2 Sevag法去蛋白的最佳处理次数 | 第72-73页 |
| 3.3 滇重楼多糖的分级纯化 | 第73-74页 |
| 第四章 滇重楼多糖的结构解析 | 第74-89页 |
| 1 材料与方法 | 第74-77页 |
| 1.1 试验材料 | 第74页 |
| 1.2 试剂与仪器 | 第74-75页 |
| 1.2.1 试验试剂 | 第74页 |
| 1.2.2 仪器和设备 | 第74-75页 |
| 1.3 试验方法 | 第75-77页 |
| 1.3.1 红外光谱(FT-IR) | 第75页 |
| 1.3.2 PPLP分子量的测定 | 第75页 |
| 1.3.3 PPLP单糖组成的测定 | 第75-76页 |
| 1.3.4 PPLP的甲基化 | 第76-77页 |
| 1.3.5 部分酸水解 | 第77页 |
| 1.3.6 NMR | 第77页 |
| 2 结果与分析 | 第77-87页 |
| 2.1 PPLP的FT-IR分析 | 第77-78页 |
| 2.2 PPLP的分子量测定 | 第78-79页 |
| 2.2.1 葡聚糖标准曲线的绘制 | 第78-79页 |
| 2.2.2 PPLP的纯度检测和分子量计算 | 第79页 |
| 2.3 PPLP的单糖组成 | 第79-80页 |
| 2.4 PPLP的甲基化分析 | 第80-82页 |
| 2.5 部分酸水解分析 | 第82-83页 |
| 2.6 NMR分析 | 第83-87页 |
| 3 讨论与结论 | 第87-89页 |
| 3.1 分子量测定方法的选择 | 第87页 |
| 3.2 单糖组成测定方法的选择 | 第87页 |
| 3.3 甲基化方法的选择 | 第87-89页 |
| 第五章 滇重楼多糖的抗氧化活性研究 | 第89-106页 |
| 1 材料与方法 | 第89-93页 |
| 1.1 材料与设备 | 第89-90页 |
| 1.1.1 供试样品 | 第89页 |
| 1.1.2 试验试剂 | 第89-90页 |
| 1.1.3 仪器和设备 | 第90页 |
| 1.2 体外抗氧化能力的测定 | 第90页 |
| 1.2.1 DPPH自由基的清除能力的测定 | 第90页 |
| 1.2.2 ·OH清除能力的测定 | 第90页 |
| 1.2.3 O_2·~-清除能力的测定 | 第90页 |
| 1.3 体内抗氧化能力的测定 | 第90-91页 |
| 1.3.1 供试动物 | 第90页 |
| 1.3.2 试验设计 | 第90-91页 |
| 1.3.3 样品的采集 | 第91页 |
| 1.4 测量指标 | 第91-93页 |
| 1.4.1 体征指标的观察 | 第91页 |
| 1.4.2 免疫器官指数的测定 | 第91页 |
| 1.4.3 生化指标的测定 | 第91-93页 |
| 1.5 数据处理 | 第93页 |
| 2 结果与分析 | 第93-104页 |
| 2.1 PPLP和PPRP的体外抗氧化评价 | 第93-95页 |
| 2.1.1 DPPH自由基的清除能力 | 第93-94页 |
| 2.1.2 ·OH的清除能力 | 第94页 |
| 2.1.3 O_2·~-的清除能力 | 第94-95页 |
| 2.2 PPLP和PPRP的体内抗氧化评价 | 第95-104页 |
| 2.2.1 小鼠体表特征变化 | 第95-96页 |
| 2.2.2 小鼠体重的变化 | 第96页 |
| 2.2.3 小鼠胸腺和脾脏指数的变化 | 第96-97页 |
| 2.2.4 PPLP和PPRP对衰老小鼠体内生化指标的影响 | 第97-104页 |
| 3 讨论与结论 | 第104-106页 |
| 第六章 滇重楼多糖的降血脂活性研究 | 第106-119页 |
| 1 材料与方法 | 第106-109页 |
| 1.1 试验材料 | 第106-107页 |
| 1.1.1 供试材料 | 第106页 |
| 1.1.2 试验试剂 | 第106页 |
| 1.1.3 试验设备 | 第106-107页 |
| 1.2 试验方法 | 第107-108页 |
| 1.2.1 供试动物 | 第107页 |
| 1.2.2 试验动物分组与处理 | 第107页 |
| 1.2.3 血清和肝脏的采集 | 第107-108页 |
| 1.3 相关指标的测定 | 第108-109页 |
| 1.3.1 血清中相关指标的测定 | 第108-109页 |
| 1.3.2 肝脏中相关指标的测定 | 第109页 |
| 2 结果与分析 | 第109-117页 |
| 2.1 滇重楼多糖对小鼠体重的影响 | 第109-110页 |
| 2.2 滇重楼多糖对血清中相关指标的的影响 | 第110-114页 |
| 2.2.1 PPLP和PPRP对TC含量的影响 | 第110-111页 |
| 2.2.2 PPLP和PPRP对血清中TG含量的影响 | 第111-112页 |
| 2.2.3 PPLP和PPRP对血清中HDL-c含量的影响 | 第112-113页 |
| 2.2.4 PPLP和PPRP对血清中LDL-c含量的影响 | 第113-114页 |
| 2.3 PPLP和PPRP对AI的影响 | 第114-115页 |
| 2.4 PPLP和PPRP对小鼠肝脏的影响 | 第115-117页 |
| 2.4.1 小鼠肝脏指数的变化 | 第115-116页 |
| 2.4.2 PPLP和PPRP对肝脏中T-SOD活力的影响 | 第116页 |
| 2.4.3 PPLP和PPRP对肝脏中GSH-Px活力的影响 | 第116-117页 |
| 2.4.4 小鼠肝脏中MDA含量的变化 | 第117页 |
| 3 讨论与结论 | 第117-119页 |
| 3.1 PPLP和PPRP的降血脂作用 | 第117-118页 |
| 3.2 PPLP和PPRP的护肝作用 | 第118-119页 |
| 结论 | 第119-120页 |
| 参考文献 | 第120-135页 |
| 致谢 | 第135-136页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第136-137页 |
| 附图及附表 | 第137-146页 |
