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CRISPR/Cas9介导的双峰驼转基因细胞的构建及其用于iPS细胞诱导的探索

摘要第4-5页
Summary第5-6页
缩略词对照表第7-10页
第一章 文献综述第10-19页
    1 研究背景第10-11页
    2 细胞重编程的研究第11-13页
        2.1 体细胞核移植技术第11-12页
        2.2 细胞融合技术第12页
        2.3 诱导多能干细胞技术第12-13页
    3 基因编辑技术的研究第13-16页
        3.1 锌指核酸酶技术第14页
        3.2 TALENs技术第14-15页
        3.3 CRISPR/Cas9系统第15-16页
    4 研究相关基因的介绍第16-17页
        4.1 Nanog基因第16页
        4.2 绿色荧光蛋白基因第16-17页
        4.3 Kan/neoR基因第17页
    5 本研究的目的意义及主要内容第17-19页
第二章 表达载体的构建第19-31页
    1 材料和试剂第19-27页
        1.1 试验材料第19-20页
        1.2 试验方法第20-27页
    2 结果第27-29页
        2.1 质粒改造MCS区验证第27页
        2.2 表达载体pUC-up双酶切验证第27-28页
        2.3 表达载体pUC-up-down双酶切验证第28页
        2.4 表达载体pUC-up-pgk-down双酶切验证第28-29页
        2.5 表达载体pUC-up-eGFP-pgk-down测序结果第29页
    3 讨论第29-31页
第三章 切割载体的构建第31-37页
    1 材料与方法第31-34页
        1.1 试验材料第31-32页
        1.2 试验方法第32-34页
    2 结果第34-36页
        2.1 pX330质粒及酶切图谱第34-35页
        2.2 pX330切割载体的检测第35-36页
    3 讨论第36-37页
第四章 稳定转染细胞系的获得第37-49页
    1 材料与方法第37-42页
        1.1 试验材料第37-38页
        1.2 试验方法第38-42页
    2 结果第42-46页
        2.1 切割质粒转染结果第42-43页
        2.2 T7E1酶切检验结果第43-44页
        2.3 表达载体和切割载体同时转染结果第44页
        2.4 添加G418药物筛选后结果第44-45页
        2.5 敲入基因片段eGFP-Neo的检测结果第45-46页
        2.6 Neo基因表达的检测结果第46页
    3 讨论第46-49页
第五章 iPS细胞诱导条件探索第49-55页
    1 材料与方法第49-52页
        1.1 试验材料第49-50页
        1.2 试验方法第50-52页
    2 结果第52-54页
    3 讨论第54-55页
结论第55-56页
参考文献第56-64页
附表第64-68页
致谢第68-69页
导师简介第69-70页
作者简介第70-71页

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