中文摘要 | 第3-4页 |
Abstract | 第4页 |
前言 | 第8-10页 |
第一部分 破骨细胞培养纯化及鉴定 | 第10-16页 |
1 实验材料及动物 | 第10-12页 |
1.1 实验动物 | 第10页 |
1.2 实验试剂 | 第10-11页 |
1.3 实验仪器及设备 | 第11页 |
1.4 细胞溶液配制 | 第11-12页 |
2 破骨细胞的诱导、纯化及鉴定 | 第12-14页 |
2.1 破骨细胞的诱导纯化 | 第12-13页 |
2.2 破骨细胞的观察及鉴定 | 第13-14页 |
3 讨论 | 第14-16页 |
第二部分 1,25二羟维生素D3通过调节ERK5影响破骨细胞分化 | 第16-28页 |
1 材料与方法 | 第16-21页 |
1.1 实验材料 | 第16-19页 |
1.1.1 实验细胞 | 第16页 |
1.1.2 实验试剂及生物制品 | 第16-18页 |
1.1.3 实验仪器 | 第18页 |
1.1.4 实验溶液配制 | 第18-19页 |
1.2 实验方法 | 第19-21页 |
1.2.1 筛选适宜浓度的1,25-(OH)2-VitD3激活ERK | 第19页 |
1.2.2 实验分组 | 第19-20页 |
1.2.3 Westernblot检测 | 第20页 |
1.2.4 破骨细胞数量和面积检测 | 第20-21页 |
1.2.5 吸收陷窝检测 | 第21页 |
1.2.6 统计学处理 | 第21页 |
2 实验结果 | 第21-25页 |
2.1 1,25二羟维生素D3与破骨细胞ERK5的量效关系 | 第21-22页 |
2.2 最适1,25二羟维生素D3激活浓度筛选 | 第22页 |
2.3 1,25二羟维生素D3对破骨细胞ERK5的影响 | 第22页 |
2.4 ERK5介导破骨细胞的分化 | 第22-25页 |
3 讨论 | 第25-28页 |
第三部分 ERK5介导1,25二羟维生素D3对破骨细胞NFATc1、CAMKⅡ表达的影响 | 第28-32页 |
1 材料与方法 | 第28-31页 |
1.1 实验材料 | 第28-29页 |
1.1.1 实验细胞 | 第28页 |
1.1.2 实验试剂 | 第28页 |
1.1.3 实验仪器 | 第28-29页 |
1.1.4 实验溶液配制及仪器处理 | 第29页 |
1.2 实验方法 | 第29-31页 |
1.2.1 实验细胞分组 | 第29页 |
1.2.2 实时定量PCR检验 | 第29-30页 |
1.2.3 统计学处理 | 第30-31页 |
2 试验结果 | 第31页 |
3 讨论 | 第31-32页 |
结论 | 第32-33页 |
参考文献 | 第33-40页 |
综述 | 第40-48页 |
参考文献 | 第45-48页 |
在学期间研究成果 | 第48-49页 |
致谢 | 第49-50页 |
中英文索引 | 第50页 |