| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-16页 |
| 研究的现状和成果 | 第12-14页 |
| 研究项目的整体内容 | 第14-15页 |
| 研究目标 | 第15页 |
| 论文的结构 | 第15-16页 |
| 一. 低血清浓度下肌腱细胞的体外增殖 | 第16-37页 |
| 1.1 材料和方法 | 第16-25页 |
| 1.1.1 材料 | 第16页 |
| 1.1.2 人肌腱细胞培养 | 第16-17页 |
| 1.1.3 肌腱细胞增殖试验 | 第17页 |
| 1.1.4 总胶原定量 | 第17页 |
| 1.1.5 RNA提取与实时反转录PCR | 第17-19页 |
| 1.1.6 天狼猩红染色下肌腱细胞和胶原纤维形态学 | 第19页 |
| 1.1.7 对照试验 | 第19-23页 |
| 1.1.8 数据分析 | 第23页 |
| 1.1.9 实验设计 | 第23-25页 |
| 1.2 结果 | 第25-32页 |
| 1.2.1 肌腱细胞增殖 | 第25-27页 |
| 1.2.2 胶原合成 | 第27-28页 |
| 1.2.3 肌腱细胞表型和分化标志物mRNA表达 | 第28-30页 |
| 1.2.4 天狼星红染色细胞形态学 | 第30-32页 |
| 1.3 讨论 | 第32-36页 |
| 1.4 小结 | 第36-37页 |
| 二. 无血清环境下肌腱细胞的体外分化 | 第37-49页 |
| 2.1 材料和方法 | 第37页 |
| 2.2 实验设计 | 第37-38页 |
| 2.3 结果 | 第38-45页 |
| 2.3.1 肌腱细胞增殖 | 第38-41页 |
| 2.3.2 胶原合成 | 第41-42页 |
| 2.3.3 肌腱细胞表型和分化标志物mRNA表达 | 第42-44页 |
| 2.3.4 天狼星红染色细胞形态学 | 第44-45页 |
| 2.4 讨论 | 第45-48页 |
| 2.5 小结 | 第48-49页 |
| 三. 序贯应用生长因子体外培养肌腱细胞 | 第49-71页 |
| 3.1 材料和方法 | 第49-53页 |
| 3.1.1 材料 | 第49页 |
| 3.1.2 人肌腱细胞培养 | 第49-50页 |
| 3.1.3 肌腱细胞增殖实验 | 第50页 |
| 3.1.4 扫描电子显微镜 | 第50页 |
| 3.1.5 组织学分析 | 第50-51页 |
| 3.1.6 对照实验 | 第51-52页 |
| 3.1.7 实验设计 | 第52页 |
| 3.1.8 数据分析 | 第52-53页 |
| 3.2 结果 | 第53-68页 |
| 3.2.1 肌腱细胞增殖 | 第53-54页 |
| 3.2.2 二维和三维培养胶原形成的观察 | 第54-56页 |
| 3.2.3 二维培养的构造物的组织学检查 | 第56-58页 |
| 3.2.4 扫描电子显微镜下三维培养的人工肌腱的微结构 | 第58-62页 |
| 3.2.5 三维培养的人工肌腱组织学检查 | 第62-64页 |
| 3.2.6 三维培养的人工肌腱Ⅰ型胶原免疫组化检查 | 第64-66页 |
| 3.2.7 三维培养的人工肌腱力学测试 | 第66-68页 |
| 3.3 讨论 | 第68-70页 |
| 3.4 小结 | 第70-71页 |
| 四. 序贯应用生长因子培养的肌腱细胞在动物体内分化能力 | 第71-82页 |
| 4.1 材料和方法 | 第71-74页 |
| 4.1.1 材料 | 第71页 |
| 4.1.2 人肌腱细胞培养 | 第71-72页 |
| 4.1.3 动物模型的准备 | 第72页 |
| 4.1.4 RNA提取与实时定量反转录PCR | 第72-73页 |
| 4.1.5 组织学分析 | 第73页 |
| 4.1.6 数据分析 | 第73页 |
| 4.1.7 实验设计 | 第73-74页 |
| 4.2 结果 | 第74-79页 |
| 4.2.1 实时定量RT-PCR结果 | 第74-76页 |
| 4.2.2 新生肌腱组织HE染色 | 第76页 |
| 4.2.3 新生肌腱组织Ⅰ型胶原免疫组化染色 | 第76-79页 |
| 4.3 讨论 | 第79-81页 |
| 4.4 小结 | 第81-82页 |
| 全文结论 | 第82-83页 |
| 论文创新点 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-94页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第94-95页 |
| 综述 生长因子对肌腱细胞表型及分化的影响 | 第95-115页 |
| 综述参考文献 | 第103-115页 |
| 致谢 | 第115页 |
