| 中文摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-24页 |
| 1. 研究背景 | 第9-11页 |
| 1.1. 艾滋病的发现及在世界和我国的现状 | 第9页 |
| 1.2. HIV-1的传播途径 | 第9-10页 |
| 1.3. HIV-1的治疗策略和现状 | 第10-11页 |
| 2. 杀微生物剂现状及其必要性 | 第11-15页 |
| 2.1. 杀微生物剂概念 | 第11页 |
| 2.2. 杀微生物剂的研究进展 | 第11-14页 |
| 2.3. 杀微生物剂的应用前景及面临问题 | 第14-15页 |
| 3. 聚阴离子化合物抗HIV-1活性作用机理研究进展 | 第15-18页 |
| 3.1. 硫酸多糖抗HIV-1活性作用机理 | 第15-16页 |
| 3.2. 硫酸多糖的应用前景 | 第16-17页 |
| 3.3. LSA的结构及性质 | 第17-18页 |
| 参考文献 | 第18-24页 |
| 第二章 LSA体外抗HIV活性及机制研究 | 第24-48页 |
| 1. 前言 | 第24页 |
| 2. 材料与方法 | 第24-27页 |
| 2.1. 细胞及病毒质粒 | 第24-25页 |
| 2.2. 主要试剂 | 第25页 |
| 2.3. 主要仪器和设备 | 第25-27页 |
| 3. 实验步骤与方法 | 第27-32页 |
| 3.1. HIV假病毒的制备及滴度测定 | 第27页 |
| 3.1.1 HIV-1假病毒的制备 | 第27页 |
| 3.1.2 LSA对ghost毒性作用 | 第27页 |
| 3.2. LSA体外抗HIV-1活性检测 | 第27-28页 |
| 3.2.1 细胞培养,病毒和样品的准备 | 第27-28页 |
| 3.2.2 LSA对HIV-1的抑制作用 | 第28页 |
| 3.3. MTT法检测LSA体外对细胞毒性作用 | 第28-29页 |
| 3.3.1 LSA对ghost毒性作用 | 第28-29页 |
| 3.3.2 LSA对VK-2毒性作用 | 第29页 |
| 3.4 检测LSA对VSV-G的抑制作用 | 第29页 |
| 3.5 Time-of-drug-addition检测 | 第29-30页 |
| 3.6 细胞-细胞 融合检测 | 第30-31页 |
| 3.7 Elisa法检测LSA抑制gp120和CD4的结合 | 第31页 |
| 3.8 检测LSA和逆转录酶抑制剂nevirapine,AZT的协同作用 | 第31-32页 |
| 3.8.1 LSA和nevirapine的协同作用 | 第32页 |
| 3.8.2 LSA和AZT的协同作用 | 第32页 |
| 4 结果与分析 | 第32-42页 |
| 4.1 LSA能够有效抑制HIV-1假病毒 | 第32-34页 |
| 4.2 LSA对VK-2细胞的毒性作用 | 第34-35页 |
| 4.3 LSA对VSV-G假病毒的抑制作用 | 第35页 |
| 4.4 Time-of-drug-additon检测表明LSA作用于病毒的入胞阶段 | 第35-36页 |
| 4.5 LSA抑制细胞-细胞融合 | 第36-38页 |
| 4.6 LSA能够阻止gp120和CD4的结合 | 第38-39页 |
| 4.7 LSA与逆转录酶抑制剂AZT和nevirapine均能产生协同抗HIV-1作用 | 第39-42页 |
| 5 讨论 | 第42-44页 |
| 5.1 LSA抗病毒活性及其作用机制探讨 | 第42页 |
| 5.2 LSA安全性及可行性评估 | 第42-43页 |
| 5.3 LSA与逆转录酶抑制剂的协同应用 | 第43-44页 |
| 6 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-48页 |
| 已发表文章列表 | 第48-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
