| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-20页 |
| 1.1 L(+)-酒石酸简介 | 第10-13页 |
| 1.1.1 L(+)-酒石酸的应用 | 第10页 |
| 1.1.2 L(+)-酒石酸的理化性质 | 第10-11页 |
| 1.1.3 酒石酸生产的历史 | 第11-13页 |
| 1.2. 顺式环氧琥珀酸水解酶(CESH)及其产生菌的研究 | 第13-14页 |
| 1.2.1 顺式环氧琥珀酸水解酶简介 | 第13页 |
| 1.2.2 顺式环氧琥珀酸产生菌的研究概况 | 第13-14页 |
| 1.3 利用固定化细胞转化顺式环氧琥珀酸 | 第14-17页 |
| 1.3.1 细胞固定化技术简介 | 第14页 |
| 1.3.2 细胞固定化方法介绍 | 第14-16页 |
| 1.3.3 固定化细胞的性质 | 第16-17页 |
| 1.3.4 利用固定化细胞生产L(+)-酒石酸的研究概况 | 第17页 |
| 本文的研究意义、研究目标与研究内容 | 第17-19页 |
| 技术路线 | 第19-20页 |
| 第二章 根瘤菌BK-20的顺式环氧琥珀酸水解酶产酶条件优化 | 第20-35页 |
| 2.1 实验材料 | 第20-21页 |
| 2.1.1 实验设备和仪器 | 第20页 |
| 2.1.2 主要实验试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.3 菌株 | 第21页 |
| 2.1.4 培养条件 | 第21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-22页 |
| 2.2.1 培养基组分的优化 | 第21-22页 |
| 2.2.2 酶活的测定方法 | 第22页 |
| 2.2.3 酒石酸的测定方法 | 第22页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第22-34页 |
| 2.3.1 培养基组分的优化 | 第22-29页 |
| 2.3.2 菌体培养条件的优化 | 第29-34页 |
| 2.4 小结 | 第34-35页 |
| 第三章 根瘤菌BK-20的细胞固定化 | 第35-41页 |
| 3.1 材料 | 第35页 |
| 3.1.1 实验设备和仪器 | 第35页 |
| 3.1.2 主要实验试剂 | 第35页 |
| 3.2 实验方法 | 第35-37页 |
| 3.2.1 细胞固定化条件的优化方法 | 第35页 |
| 3.2.2 酶活的测定方法 | 第35-36页 |
| 3.2.3 酒石酸的测定方法 | 第36页 |
| 3.2.4 几种固定化载体的包埋方法 | 第36-37页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第37-40页 |
| 3.3.1 细胞固定化条件的优化 | 第37-39页 |
| 3.3.2 固定化细胞的稳定性 | 第39-40页 |
| 3.4 小结 | 第40-41页 |
| 第四章 结论与展望 | 第41-43页 |
| 4.1 结论 | 第41页 |
| 4.2 创新点 | 第41-42页 |
| 4.3 展望 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-45页 |
| 作者简历 | 第45页 |
