| 摘要 | 第3-7页 |
| ABSTRACT | 第7-12页 |
| 前言 | 第15-18页 |
| 第一部分 白藜芦醇对人肠癌细胞增殖、凋亡的影响及其作用机制探讨 | 第18-39页 |
| 1.前言 | 第18-19页 |
| 2.材料与仪器 | 第19-21页 |
| 2.1 实验材料 | 第19-21页 |
| 2.2 主要仪器及设备 | 第21页 |
| 3.研究方法 | 第21-26页 |
| 3.1 细胞培养 | 第21-22页 |
| 3.2 MTT实验[28] | 第22-23页 |
| 3.3 流式细胞学检测细胞周期分布 | 第23-24页 |
| 3.4 RT-PCR扩增反应 | 第24-26页 |
| 3.5 统计学方法 | 第26页 |
| 4.实验结果 | 第26-33页 |
| 4.1 MTT比色法测定不同浓度白藜芦醇作用不同时间后对SW480细胞增殖的影响 | 第26-28页 |
| 4.2 流式细胞学检测白藜芦醇对SW480细胞周期的影响 | 第28-29页 |
| 4.3 半定量RT-PCR检测肠癌SW480细胞凋亡相关基因的表达结果 | 第29-33页 |
| 5.讨论 | 第33-38页 |
| 5.1 白黎芦醇的抑制结肠癌增殖及诱导凋亡的探讨 | 第33-35页 |
| 5.2 白黎芦醇对细胞周期分布的影响 | 第35-36页 |
| 5.3 白藜芦醇促进结肠癌细胞凋亡的作用机制探讨 | 第36-38页 |
| 6.结论 | 第38-39页 |
| 第二部分 白藜芦醇抗肿瘤活性与COX-2 关系的研究 | 第39-61页 |
| 1.前言 | 第39-40页 |
| 2.材料与仪器 | 第40-44页 |
| 2.1 实验材料 | 第40-44页 |
| 2.2 主要仪器及设设备 | 第44页 |
| 3.实验方法 | 第44-48页 |
| 3.1 COX-2 siRNA转染 | 第44-45页 |
| 3.2 RT-PCR测定COX-2 mRNA | 第45-46页 |
| 3.3 MTT检测COX-2 siRNA转染后SW480细胞增殖情况 | 第46页 |
| 3.4 Western-Blotting实验 | 第46-48页 |
| 3.5 统计学方法 | 第48页 |
| 4.实验结果 | 第48-55页 |
| 4.1 转染条件的选择与优化 | 第48-49页 |
| 4.2 RT-PCR检测COX-2 siRNA基因抑制效果 | 第49-50页 |
| 4.3 MTT检测siRNA转染后SW480细胞增殖的情况 | 第50-51页 |
| 4.4 结肠癌细胞中COX-2 表达高于正常人结肠细胞 | 第51-53页 |
| 4.5 Western-Blotting检测不同浓度白藜芦醇作用SW480细胞后COX-2及PEG2蛋白表达的变化 | 第53-54页 |
| 4.6 Western-Blotting检测白藜芦醇作用于转染后SW480细胞的COX-2蛋白表达的变化 | 第54-55页 |
| 5.讨论 | 第55-60页 |
| 5.1 COX-2 在肠癌细胞中高表达 | 第56-57页 |
| 5.2 白藜芦醇抗结肠癌作用与COX-2 及下游产物PGE2的关系 | 第57-58页 |
| 5.3 COX-2 基因沉默后对肠癌细胞增殖的影响及白藜芦醇的进一步抑制 | 第58-60页 |
| 6.结论 | 第60-61页 |
| 全文总结及展望 | 第61-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-70页 |
| 攻读学位期间的研究果 | 第70-71页 |
| 综述 | 第71-76页 |
| 参考文献 | 第75-76页 |
