| 缩略词表 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-11页 |
| Abstract | 第11-17页 |
| 前言 | 第18-23页 |
| 第一章 我国HIV-1 流行毒株的分离鉴定和表型特征研究 | 第23-57页 |
| 1.1 研究背景 | 第23-24页 |
| 1.2 实验材料 | 第24-26页 |
| 1.2.1 病人血液标本 | 第24页 |
| 1.2.2 病毒分离培养上清液 | 第24页 |
| 1.2.3 人外周血单核细胞 | 第24页 |
| 1.2.4 细胞培养基 | 第24-25页 |
| 1.2.5 主要试剂 | 第25页 |
| 1.2.6 主要实验仪器 | 第25页 |
| 1.2.7 相关软件 | 第25-26页 |
| 1.2.8 引物 | 第26页 |
| 1.2.9 主要耗材 | 第26页 |
| 1.2.10 统计学方法 | 第26页 |
| 1.3 实验方法 | 第26-34页 |
| 1.3.1 病毒的分离与培养 | 第26-28页 |
| 1.3.2 病毒基因的扩增和测序及基因型多样性分析 | 第28-32页 |
| 1.3.3 复制动力学曲线检测 | 第32-33页 |
| 1.3.4 表型预测 | 第33页 |
| 1.3.5 耐药突变的确定 | 第33页 |
| 1.3.6 病毒载量检测方法和p24抗原检测方法的评估 | 第33-34页 |
| 1.4 结果 | 第34-54页 |
| 1.4.1 病毒的分离和扩大培养 | 第34-36页 |
| 1.4.2 病毒基因的扩增测序及基因型多样性分析 | 第36-40页 |
| 1.4.3 复制动力学曲线的测定 | 第40-41页 |
| 1.4.4 辅助受体/V3环顶端四肽/V3环糖基化位点预测结果 | 第41-47页 |
| 1.4.5 耐药突变的确定 | 第47-49页 |
| 1.4.6 p24抗原检测方法和病毒载量检测方法的评估 | 第49-54页 |
| 1.5 讨论 | 第54-57页 |
| 第二章 HIV-1 C类病毒Rev蛋白第101位提前终止密码子及其生物效应研究 | 第57-102页 |
| 2.1 研究背景 | 第57-59页 |
| 2.2 实验材料 | 第59-62页 |
| 2.2.1 质粒 | 第59页 |
| 2.2.2 细胞 | 第59-60页 |
| 2.2.3 细胞培养基 | 第60-61页 |
| 2.2.4 抗体 | 第61页 |
| 2.2.5 引物 | 第61页 |
| 2.2.6 主要仪器 | 第61页 |
| 2.2.7 其它耗材 | 第61-62页 |
| 2.2.8 相关软件 | 第62页 |
| 2.2.9 统计学方法 | 第62页 |
| 2.3 实验方法 | 第62-76页 |
| 2.3.1 不同基因型HIV-1 中Rev101PTC出现频率的统计及比较 | 第63-64页 |
| 2.3.2 Rev101PTC对B和CRF07_BC毒株复制能力的影响 | 第64-72页 |
| 2.3.3 Rev-RRE功能活性测定 | 第72-75页 |
| 2.3.4 RRE亚型特异性位点对于Rev-RRE活性的影响 | 第75-76页 |
| 2.4 实验结果 | 第76-98页 |
| 2.4.1 Rev101PTC是HIV-1 C亚型和C类重组型的亚型特征 | 第76-77页 |
| 2.4.2 Rev101PTC降低B毒株复制但对CRF07_BC蛋白表达无影响 | 第77-86页 |
| 2.4.3 Rev101PTC和RRE亚型特征对Rev-RRE活性的影响 | 第86-91页 |
| 2.4.4 部分RRE亚型特异性位点对Rev-RRE活性的影响 | 第91-98页 |
| 2.5 讨论 | 第98-102页 |
| 研究结论 | 第102-103页 |
| 参考文献 | 第103-111页 |
| 个人简历 | 第111-113页 |
| 致谢 | 第113-114页 |
