| 摘要 | 第7-10页 |
| ABSTRACT | 第10-13页 |
| 缩略词(ABBREVIATION) | 第14-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-27页 |
| 1 H_2O_2作为信号分子在植物中的研究进展 | 第15-19页 |
| 1.1 H_2O_2作为信号分子对植物生命活动的调控作用 | 第15-16页 |
| 1.2 植物体内H_2O_2相关信号调控网络 | 第16-17页 |
| 1.3 H_2O_2含量在植物体内的调节 | 第17-19页 |
| 2 果梅休眠的研究进展 | 第19-20页 |
| 3 赤霉素在果树破眠方面的应用概况 | 第20-22页 |
| 参考文献 | 第22-27页 |
| 第二章 外源GA4解除果梅花芽休眠中H202相关生理指标测定及信号相关基因表达分析 | 第27-47页 |
| 1 材料与方法 | 第28-32页 |
| 1.1 试验材料 | 第28页 |
| 1.2 试验方法 | 第28-29页 |
| 1.3 生理指标测定 | 第29页 |
| 1.4 总RNA提取及cDNA合成 | 第29-30页 |
| 1.5 抗氧化酶类基因及信号相关基因的引物序列 | 第30-31页 |
| 1.6 数据处理 | 第31-32页 |
| 2 结果与分析 | 第32-39页 |
| 2.1 不同时期不同处理对'丰后'果梅花芽的破眠效果 | 第32页 |
| 2.2 不同处理对'丰后'果梅花芽萌芽率变化的影响 | 第32-33页 |
| 2.3 休眠解除前后'丰后'果梅花芽内H_2O_2含量的变化趋势 | 第33-34页 |
| 2.4 休眠解除前后'丰后'果梅花芽内抗氧化酶类含量的变化 | 第34-39页 |
| 3 讨论 | 第39-45页 |
| 3.1 不同处理对休眠解除的效果 | 第39页 |
| 3.2 GA_4处理对花芽内H_2O_2含量的影响 | 第39-40页 |
| 3.3 GA_4处理对花芽内抗氧化相关酶类活性及相关基因表达量的影响 | 第40-42页 |
| 3.4 GA_4信号转导相关基因的表达分析 | 第42-43页 |
| 3.5 H_2O_2信号转导相关基因的表达分析 | 第43-45页 |
| 参考文献 | 第45-47页 |
| 第三章 外源GA_4解除果梅嫁接苗叶芽休眠最佳施用时期确定及H_2O_2相关生理效应研究 | 第47-59页 |
| 1 材料与方法 | 第48-50页 |
| 1.1 植物材料 | 第48页 |
| 1.2 主要仪器和耗材处理 | 第48页 |
| 1.3 材料处理及破眠标准 | 第48-49页 |
| 1.4 温度记录与统计 | 第49页 |
| 1.5 生理指标测定 | 第49页 |
| 1.6 数据处理 | 第49-50页 |
| 2 结果与分析 | 第50-54页 |
| 2.1 需冷量进程不同阶段采用250μM GA_4处理对'桃形梅'嫁接苗叶芽萌芽率的影响 | 第50-51页 |
| 2.2 需冷量进程不同阶段采用300μM GA_4处理对'丰后'嫁接苗叶芽萌芽率的影响 | 第51页 |
| 2.3 休眠解除前后果梅嫁接苗叶芽内H_20_2含量的变化趋势 | 第51-52页 |
| 2.4 休眠解除前后果梅嫁接苗叶芽内抗氧化酶类含量的变化 | 第52-54页 |
| 3 讨论 | 第54-56页 |
| 3.1 GA_4处理解除'桃形梅'和'丰后'休眠的最佳施用时期 | 第54页 |
| 3.2 GA_4处理对叶芽内H_2O_2含量的影响 | 第54-55页 |
| 3.3 GA_4处理对叶芽内抗氧化相关酶类活性的影响 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-59页 |
| 第四章 过表达PmRGL2基因对杨树H_2O_2含量及相关基因表达的影响 | 第59-81页 |
| 1 材料与方法 | 第60-67页 |
| 1.1 材料 | 第60页 |
| 1.2 载体及菌株 | 第60页 |
| 1.3 主要器材与试剂 | 第60-61页 |
| 1.4 GA_4提取与纯化 | 第61页 |
| 1.5 HPLC-MS/MS条件 | 第61-62页 |
| 1.6 植物培养基 | 第62页 |
| 1.7 方法 | 第62-65页 |
| 1.8 相关基因的引物序列 | 第65-67页 |
| 2 结果与分析 | 第67-75页 |
| 2.1 植物过表达载体pYH4215-PmRGL2构建流程 | 第67页 |
| 2.2 植物过表达载体pYH4215-PmRGL2的鉴定 | 第67-69页 |
| 2.3 转基因杨树植株的再生 | 第69页 |
| 2.4 GUS组织化学染色检测 | 第69-70页 |
| 2.5 报告基因Hyg检测转基因杨树 | 第70页 |
| 2.6 转基因杨树的PCR检测 | 第70-71页 |
| 2.7 转基因杨树H_2O_2含量及相关生理指标测定 | 第71-72页 |
| 2.8 H_2O_2相关基因在转PmRGL2基因杨树和野生型杨树叶片内的表达 | 第72页 |
| 2.9 赤霉素相关基因在转PmRGL2基因杨树和野生型杨树叶片内的表达 | 第72-73页 |
| 2.10 信号转导相关基因在转PmRGL2基因杨树和野生型杨树叶片内的表达 | 第73-74页 |
| 2.11 杨树组培苗的GA_4含量测定 | 第74-75页 |
| 3 讨论 | 第75-79页 |
| 3.1 PmRGL2基因超表达转基因植株的获得 | 第75页 |
| 3.2 转PmRGL2基因对杨树叶片内H_2O_2含量及抗氧化酶类活性和相关基因的影响 | 第75-76页 |
| 3.3 赤霉素含量和相关基因在转PmRGL2基因杨树和野生型杨树叶片内的表达 | 第76-77页 |
| 3.4 信号转导相关基因在转PmRGL2基因杨树和野生型杨树叶片内的表达 | 第77-79页 |
| 参考文献 | 第79-81页 |
| 全文总结 | 第81-83页 |
| 主要创新点 | 第83-85页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第85-87页 |
| 致谢 | 第87页 |
