英文缩略词对照 | 第1-9页 |
摘要 | 第9-12页 |
ABSTRACT | 第12-15页 |
1 前言 | 第15-17页 |
2 实验材料 | 第17-20页 |
·动物 | 第17页 |
·药物和试剂 | 第17-19页 |
·仪器与设备 | 第19-20页 |
3 实验方法 | 第20-28页 |
·大鼠CIA模型的诱导 | 第20-21页 |
·分组及给药 | 第21页 |
·足爪肿胀度的评价 | 第21页 |
·大鼠肠系膜淋巴结淋巴细胞(MLNLs)的分离 | 第21页 |
·病理组织学检查 | 第21-22页 |
·MLNLs 培养上清 cAMP 含量测定 | 第22-23页 |
·免疫组织化学检测 | 第23-25页 |
·试剂及材料 | 第23-24页 |
·操作流程 | 第24页 |
·结果判断 | 第24-25页 |
·蛋白免疫印迹法检测MLNLsβ_2-AR、GRK2、GRK3、Gαs 和 β-arrestinl,2 蛋白表达 | 第25-27页 |
·大鼠 MLNs 总蛋白的提取 | 第25页 |
·大鼠MLNLs 胞浆和胞膜蛋白的提取 | 第25页 |
·蛋白定量(Lowry 法) | 第25-26页 |
·Western-blot 操作步骤 | 第26-27页 |
·统计处理 | 第27-28页 |
4 结果 | 第28-42页 |
·鸡II 型胶原(CCⅡ)抑制CIA 大鼠关节肿胀及MLNs 和关节的病理变化 | 第28-32页 |
·CCⅡ 对CIA 大鼠继发侧关节肿胀度的影响 | 第28页 |
·CCⅡ 对 CIA大鼠 MLNs 和关节滑膜组织病理学的影响 | 第28-32页 |
·CCⅡ 对CIA 大鼠MLNLs 胞内cAMP 水平的影响 | 第32-33页 |
·CCⅡ 对CIA 大鼠MLNs 的β_2-AR、GRK2、GRK3 和β-arrestinl, 2 蛋白表达的影响 | 第33-38页 |
·CIA 大鼠MLNLs 的β_2-AR、GRK2、GRK3 和β-arrestinl, 2 蛋白表达的影响 | 第38-42页 |
·CCⅡ 对CIA 大鼠MLNs 的总蛋白β_2-AR、GRK2、GRK3 和 β-arrestinl,2 蛋白表达的影响 | 第38-40页 |
·CCⅡ 对CIA 大鼠MLNLs 的胞浆和胞膜蛋白β_2-AR、GRK2、G_αs 和 β-arrestinl,2 蛋白表达的影响 | 第40-42页 |
5 讨论 | 第42-46页 |
·CCⅡ 升高 CIA 大鼠 MLNLs 的 cAMP 水平,恢复 G 蛋白-AC-cAMP 信号正常转导, 降低 MLNLs 过度增殖 | 第42-43页 |
·CCⅡ 促进 CIA 大鼠 MLNLs β_2-AR 脱敏,调节 GRK2/β-arrestin1,2 的表达平衡是其介导 G 蛋白-AC-cAMP 信号正常转导、诱导免疫耐受的机制之一 | 第43-46页 |
6. 结论 | 第46-47页 |
参考文献 | 第47-52页 |
附录 | 第52-53页 |
致谢 | 第53-55页 |
综述 | 第55-68页 |
参考文献 | 第62-68页 |