| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 缩补词表 | 第15-17页 |
| 第一章 拟南芥光信号转导通路分子机制的研究进展 | 第17-40页 |
| 1.1 蓝光受体 | 第17-21页 |
| 1.1.1 蓝光受体CRY的结构 | 第17-19页 |
| 1.1.2 蓝光受体CRY的性质和功能 | 第19-20页 |
| 1.1.3 LOV型的蓝光受体 | 第20-21页 |
| 1.2 紫外光受体 | 第21页 |
| 1.3 红光/远红光受体 | 第21-27页 |
| 1.3.1 光敏素的结构 | 第21-23页 |
| 1.3.2 光敏素的作用方式 | 第23页 |
| 1.3.3 光敏素的亚细胞定位 | 第23-26页 |
| 1.3.4 光敏素蛋白稳定性的调控 | 第26-27页 |
| 1.4 光信号通路的负调控因子 | 第27-34页 |
| 1.4.1 光信号通路的负调控因子COP/DET/FUS | 第27-30页 |
| 1.4.2 光信号通路的负调控因子PIF | 第30-34页 |
| 1.5 光信号通路的正调控因子 | 第34-37页 |
| 1.5.1 光信号通路的正调控因子CIBs | 第34页 |
| 1.5.2 光信号通路的正调控因子HY5 | 第34-35页 |
| 1.5.3 光信号通路的正调控因子HFR1 | 第35-36页 |
| 1.5.4 光信号通路的正调控因子LAF1 | 第36-37页 |
| 1.5.5 光信号通路的正调控因子PIL1 | 第37页 |
| 1.6 光信号通路的分子调控模式 | 第37-40页 |
| 1.6.1 蓝光信号转导通路 | 第38-39页 |
| 1.6.2 红光/远红光信号转导通路 | 第39-40页 |
| 第二章 材料和方法 | 第40-68页 |
| 2.1 材料 | 第40-42页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第40-41页 |
| 2.1.2 菌株和原始质粒 | 第41-42页 |
| 2.2 实验方法 | 第42-68页 |
| 2.2.1 植物材料的构建 | 第42-43页 |
| 2.2.2 表达载体的构建 | 第43-44页 |
| 2.2.3 PCR反应的体系和条件 | 第44-46页 |
| 2.2.4 DNA片段的回收、酶切及连接 | 第46-47页 |
| 2.2.5 大肠杆菌转化 | 第47-48页 |
| 2.2.6 大肠杆菌质粒提取 | 第48-49页 |
| 2.2.7 农杆菌转化 | 第49-50页 |
| 2.2.8 植物材料的种植 | 第50-52页 |
| 2.2.9 植物材料的转化 | 第52-53页 |
| 2.2.10 利用烟草系统分析体内蛋白的相互作用 | 第53页 |
| 2.2.11 拟南芥幼苗的荧光显微镜观察 | 第53页 |
| 2.2.12 拟南芥幼苗下胚轴长度的测定 | 第53-54页 |
| 2.2.13 拟南芥幼苗DNA的提取 | 第54页 |
| 2.2.14 拟南芥基因表达的检测分析 | 第54-56页 |
| 2.2.15 酵母双杂交的试验分析 | 第56-62页 |
| 2.2.16 酵母总蛋白的提取 | 第62页 |
| 2.2.17 抗体的纯化和制备 | 第62-63页 |
| 2.2.18 蛋白的Western Blot检测 | 第63-66页 |
| 2.2.19 COP1－PIL1以及phyB－PIL1相互作用的免疫共沉淀（Co-IP）分析 | 第66-67页 |
| 2.2.20 Dual-LUC试验分析 | 第67-68页 |
| 第三章 实验结果与讨论 | 第68-113页 |
| 3.1 引言 | 第68-69页 |
| 3.2 实验结果 | 第69-107页 |
| 3.2.1 PIL1光形态建成的正调控因子 | 第69-72页 |
| 3.2.2 PIL1和COP1在体外和体内存在直接的相互作用 | 第72-77页 |
| 3.2.3 PIL1蛋白在黑暗下发生依赖于COP1的 26S蛋白酶体降解途径 | 第77-79页 |
| 3.2.4 光促进 PIL1 蛋白的积累 | 第79-83页 |
| 3.2.5 PIL1和HFR1在调控光形态建成上都位于COP1的遗传下游，并且两者协同促进光形态建成 | 第83-85页 |
| 3.2.6 PIL1与HFR1在体外、体内存在直接的相互作用 | 第85-88页 |
| 3.2.7 PIL1和phyB存在依赖于红光的相互作用 | 第88-93页 |
| 3.2.8 phyB促进PIL1在红光下的积累 | 第93-94页 |
| 3.2.9 phyB在红光下促进COP1和PIL1解离 | 第94-95页 |
| 3.2.10 PIL1和PIFs存在直接相互作用 | 第95-99页 |
| 3.2.11 PIFs在遗传上上位于PIL1调控光形态建成 | 第99-100页 |
| 3.2.12 PIL1和HFR1共同抑制PIFs转录活性 | 第100-107页 |
| 3.3 讨论 | 第107-113页 |
| 3.3.1 COP1通过和PIL1直接相互作用，促进PIL1在黑暗下降解 | 第107-108页 |
| 3.3.2 phyB和PIL1在红光下相互作用，并且通过促进COP1－PIL1的解离来稳定PIL1蛋白 | 第108-109页 |
| 3.3.3 PIL1和HFR1通过形成异源二聚体来共同抑制PIFs，协同促进光形态建成 | 第109-110页 |
| 3.3.4 PIL1调控光形态建成的作用模式 | 第110-113页 |
| 第四章 创新点与研究展望 | 第113-115页 |
| 4.1 创新点 | 第113页 |
| 4.2 研究展望 | 第113-115页 |
| 参考文献 | 第115-137页 |
| 附录 | 第137-156页 |
| 发表论文 | 第156页 |
