中文摘要 | 第4-5页 |
abstract | 第5-6页 |
第一章 前言 | 第10-13页 |
第二章 T细胞特异性zbtb24过表达小鼠的构建 | 第13-26页 |
1. 实验材料 | 第13-14页 |
1.1 实验动物 | 第13页 |
1.2 实验仪器与耗材 | 第13页 |
1.3 主要试剂 | 第13-14页 |
1.4 溶液配制 | 第14页 |
2. 实验方法 | 第14-21页 |
2.1 zbtb24~(TOE)小鼠的制备 | 第14-16页 |
2.2 流式细胞术鉴定新生小鼠中zbtb24-3xFlag的表达水平 | 第16-17页 |
2.3 Q-PCR鉴定新生小鼠zbtb24的基因表达水平 | 第17-19页 |
2.4 Western鉴定新生小鼠中zbtb24的蛋白表达水平 | 第19-20页 |
2.5 统计学处理 | 第20-21页 |
3. 实验结果 | 第21-24页 |
3.1 T细胞特异性zbtb24过表达载体的构建 | 第21页 |
3.2 zbtb24~(TOE)小鼠基因型的鉴定 | 第21-22页 |
3.3 zbtb24~(TOE)小鼠中zbtb24表达量的检测 | 第22-24页 |
4. 讨论 | 第24-26页 |
第三章 zbtb24~(TOE)小鼠中T细胞的发育、表型和体外功能分析 | 第26-36页 |
1. 实验材料 | 第26-27页 |
1.1 实验动物 | 第26页 |
1.2 实验仪器与耗材 | 第26页 |
1.3 主要试剂 | 第26-27页 |
2. 实验方法 | 第27-28页 |
2.1 流式细胞染色 | 第27页 |
2.2 胞内染色测细胞因子 | 第27页 |
2.3 磁珠分选(mojosortTM mouse CD3 T cell isolation kit, Biolegend) | 第27页 |
2.4 CFSE标记检测细胞增殖 | 第27页 |
2.5 细胞凋亡实验 | 第27-28页 |
2.6 CCK8测细胞增殖 | 第28页 |
2.7 统计学处理 | 第28页 |
3. 实验结果 | 第28-34页 |
3.1 zbtb24过表达对T细胞的在胸腺中的发育无影响 | 第28-29页 |
3.2 zbtb24过表达对脾脏中T细胞的表型无影响 | 第29-31页 |
3.3 zbtb24过表达对T细胞的体外增殖和凋亡无显著影响 | 第31-33页 |
3.4 zbtb24过表达似乎抑制了CD8细胞分泌IFN-γ 的能力 | 第33-34页 |
4. 讨论 | 第34-36页 |
第四章 zbtb24~(TOE)小鼠与对照小鼠体内抗肿瘤免疫和体液免疫反应的比较 | 第36-60页 |
1. 实验材料 | 第36-37页 |
1.1 实验动物 | 第36页 |
1.2 实验仪器与耗材 | 第36-37页 |
1.3 主要试剂 | 第37页 |
1.4 溶液配制 | 第37页 |
2. 实验方法 | 第37-42页 |
2.1 Boiled OVA免疫小鼠 | 第37-38页 |
2.2 OVAp-CRT免疫小鼠 | 第38-40页 |
2.3 DC+OVA/DC+OVA257-264 免疫小鼠 | 第40页 |
2.4 CFA/IFA+OVA免疫小鼠 | 第40-41页 |
2.5 小鼠黑色素肿瘤模型的建立 | 第41页 |
2.6 小鼠体内T细胞表型、功能的检测 | 第41-42页 |
2.7 统计学处理 | 第42页 |
3. 实验结果 | 第42-58页 |
3.1 zbtb24过表达对体内抗肿瘤免疫应答的影响 | 第42-53页 |
3.2 zbtb24过表达对体液免疫应答的影响 | 第53-58页 |
4. 讨论 | 第58-60页 |
文献综述 ZBTB家族蛋白在T淋巴细胞中功能的研究进展 | 第60-69页 |
参考文献 | 第69-76页 |
英文缩略词 | 第76-78页 |
致谢 | 第78-80页 |
个人简历 | 第80-81页 |