| 中文摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 前言 | 第10-12页 |
| 材料与方法 | 第12-23页 |
| 动物实验模型的建立 | 第12-15页 |
| 1、实验动物 | 第12页 |
| 2、实验动物饲料 | 第12页 |
| 3、动物模型的构建及分组 | 第12-14页 |
| 4、实验标本的收集，实验动物的处理 | 第14-15页 |
| 主要设备 | 第15页 |
| 主要试剂 | 第15-16页 |
| 检测指标和实验方法 | 第16-22页 |
| 1、大鼠的一般情况 | 第16页 |
| 2、大鼠的实验室指标 | 第16页 |
| 3、Real time-PCR：检测肾病综合征大鼠肾组织MDR1 mRNA表达的结果 | 第16-19页 |
| 4、免疫组织化学染色：检测各组大鼠肾组织P-gp170表达的结果 | 第19-20页 |
| 5、肾脏病理 | 第20-22页 |
| 统计学处理 | 第22-23页 |
| 结果 | 第23-37页 |
| 1、大鼠的一般状态 | 第23页 |
| 2、24 小时尿蛋白定量的变化 | 第23-24页 |
| 3、血生化指标 | 第24-26页 |
| 4、Real time-PCR检测各组大鼠肾组织MDR1 mRNA表达的结果 | 第26-28页 |
| 5、免疫组织化学方法检测大鼠肾组织P-gp170表达的结果 | 第28-31页 |
| 6、大鼠肾组织MDR1 m RNA（转录水平）与P-gp170（蛋白水平） 表达的相关性分析 | 第31-32页 |
| 7、大鼠肾组织中P-gp170的表达与24小时尿蛋白的关系 | 第32-33页 |
| 8、大鼠肾脏的形态学检查 | 第33-37页 |
| 讨论 | 第37-43页 |
| 结论 | 第43-44页 |
| 不足与展望 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-49页 |
| 综述 | 第49-58页 |
| 参考文献 | 第54-58页 |
| 英汉双解缩略词 | 第58-59页 |
| 攻读学位期间公开发表及待发表的文章 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
