| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 索引 | 第14-17页 |
| 第一章 绪论 | 第17-39页 |
| 1.1 溴代阻燃剂使用与污染现状 | 第17-20页 |
| 1.1.1 溴代阻燃剂简介 | 第17-18页 |
| 1.1.2 溴代阻燃剂的应用与污染 | 第18-20页 |
| 1.2 生物体内的PBDEs和TBBPA及其衍生物 | 第20-23页 |
| 1.2.1 生物体内的PBDEs及其衍生物 | 第20-22页 |
| 1.2.2 生物体内的TBBPA | 第22-23页 |
| 1.3 PBDEs和TBBPA的毒性效应 | 第23-26页 |
| 1.4 PBDEs和TBBPA在的生物体内的代谢 | 第26-35页 |
| 1.4.1 体内原位代谢研究 | 第26-28页 |
| 1.4.2 体外模拟体代谢研究 | 第28-35页 |
| 1.5 研究目的及意义 | 第35-39页 |
| 第二章 2,2’,4,4’-四溴联苯醚在鲫鱼体内的组织分布、代谢及对肝酶系统的影响 | 第39-65页 |
| 2.1 引言 | 第39-40页 |
| 2.2 材料与方法 | 第40-48页 |
| 2.2.1 试剂与材料 | 第40-41页 |
| 2.2.2 溶液配制 | 第41-42页 |
| 2.2.3 实验仪器 | 第42页 |
| 2.2.4 鲫鱼的驯养 | 第42-43页 |
| 2.2.5 暴露实验和样品采集 | 第43页 |
| 2.2.6 鱼体组织BDE 47的分析方法 | 第43-44页 |
| 2.2.7 BDE47在鱼体内代谢产物分析方法 | 第44-45页 |
| 2.2.8 酶活性测定方法 | 第45-46页 |
| 2.2.9 血清THs水平的测定 | 第46页 |
| 2.2.10 肝脏组织损伤观察 | 第46页 |
| 2.2.11 仪器分析 | 第46-47页 |
| 2.2.12 质量控制与数据分析 | 第47-48页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第48-64页 |
| 2.3.1 BDE 47在鲫鱼各组织间的分配 | 第48-51页 |
| 2.3.2 BDE 47在鲫鱼肝脏内代谢产物的鉴定 | 第51-56页 |
| 2.3.3 BDE 47对鲫鱼肝脏代谢酶的影响及肝脏毒性 | 第56-64页 |
| 2.4 结论 | 第64-65页 |
| 第三章 鲫鱼体外肝脏亚细胞组分代谢系统建立 | 第65-75页 |
| 3.1 引言 | 第65-66页 |
| 3.2 材料与方法 | 第66-69页 |
| 3.2.1 试剂与材料 | 第66页 |
| 3.2.2 溶液配制 | 第66页 |
| 3.2.3 实验仪器 | 第66-67页 |
| 3.2.4 实验鱼驯养 | 第67页 |
| 3.2.5 亚细胞组分提取及条件优化 | 第67页 |
| 3.2.6 酶活性测定方法 | 第67-68页 |
| 3.2.7 鲫鱼肝微粒体代谢酶活性影响因素 | 第68页 |
| 3.2.8 两种药物对鲫鱼肝脏微粒体代谢酶活性的影响 | 第68-69页 |
| 3.2.9 数据分析 | 第69页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第69-74页 |
| 3.3.1 微粒体提取条件优化 | 第69-70页 |
| 3.3.2 微粒体和S9酶活性 | 第70-71页 |
| 3.3.3 孵育时间对微粒体和S9酶活性的影响 | 第71-73页 |
| 3.3.4 苯巴比妥和地塞米松对鲫鱼肝微粒体酶活性影响 | 第73-74页 |
| 3.4 结论 | 第74-75页 |
| 第四章 鲫鱼肝脏亚细胞组织对典型溴代阻燃剂的体外代谢 | 第75-101页 |
| 4.1 引言 | 第75-76页 |
| 第一节 BDE15和BDE47体外代谢研究 | 第76-89页 |
| 4.2 材料与方法 | 第76-79页 |
| 4.2.1 试剂与材料 | 第76页 |
| 4.2.2 溶液配制 | 第76页 |
| 4.2.3 实验仪器 | 第76页 |
| 4.2.4 实验鱼驯养及肝脏亚细胞组分提取 | 第76页 |
| 4.2.5 体外代谢实验 | 第76-78页 |
| 4.2.6 PBDEs的萃取 | 第78页 |
| 4.2.7 PBDEs代谢产物的萃取 | 第78-79页 |
| 4.2.8 仪器分析条件 | 第79页 |
| 4.2.9 质量控制与数据分析 | 第79页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第79-88页 |
| 4.3.1 氧化孵育条件优化结果 | 第79-81页 |
| 4.3.2 PBDE的还原代谢 | 第81-82页 |
| 4.3.3 PBDE氧化代谢产物的鉴定 | 第82-88页 |
| 4.4 小结 | 第88-89页 |
| 第二节 四溴双酚A体外代谢研究 | 第89-101页 |
| 4.5 材料与方法 | 第89-92页 |
| 4.5.1 试剂与材料 | 第89页 |
| 4.5.2 实验仪器 | 第89页 |
| 4.5.3 实验鱼驯养及肝脏亚细胞组分提取 | 第89页 |
| 4.5.4 体外代谢实验 | 第89-90页 |
| 4.5.5 TBBPA的萃取 | 第90-91页 |
| 4.5.6 TBBPA代谢产物的萃取 | 第91页 |
| 4.5.7 仪器分析条件 | 第91页 |
| 4.5.8 质量控制与数据分析 | 第91-92页 |
| 4.6 结果与讨论 | 第92-100页 |
| 4.6.1 氧化孵育条件优化结果 | 第92-94页 |
| 4.6.2 TBBPA代谢产物的鉴定 | 第94-100页 |
| 4.7 小结 | 第100-101页 |
| 第五章 典型BFRs在肝脏组织中的关键代谢酶及代谢机制 | 第101-115页 |
| 5.1 引言 | 第101-102页 |
| 5.2 材料与方法 | 第102-105页 |
| 5.2.1 试剂与材料 | 第102页 |
| 5.2.2 溶液配制 | 第102页 |
| 5.2.3 实验仪器 | 第102页 |
| 5.2.4 鲫鱼、猪肝脏微粒体组分制备 | 第102-103页 |
| 5.2.5 代谢抑制实验 | 第103页 |
| 5.2.6 酶动力学参数测定 | 第103-104页 |
| 5.2.7 半数抑制浓度(IC_(50)和抑制常数(K_i)的测定 | 第104-105页 |
| 5.2.8 质量控制与数据分析 | 第105页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第105-114页 |
| 5.3.1 BDE15和TBBPA在鲫鱼肝脏中关键代谢酶的确定 | 第105-107页 |
| 5.3.2 EROD酶米氏常数测定 | 第107-110页 |
| 5.3.3 化合物半数抑制浓度(IC_(50)和抑制常数(K_i)及代谢机理分析 | 第110-114页 |
| 5.4 结论 | 第114-115页 |
| 第六章 结论与展望 | 第115-117页 |
| 6.1 研究结论 | 第115-116页 |
| 6.2 展望 | 第116-117页 |
| 本文的创新点 | 第117-119页 |
| 参考文献 | 第119-137页 |
| 攻读博士学位期间取得的科研成果 | 第137-139页 |
| 致谢 | 第139-141页 |
