| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-17页 |
| 0 前言 | 第17-44页 |
| ·纳米技术与癌症治疗 | 第17-24页 |
| ·纳米粒子的肿瘤治疗机制 | 第18-19页 |
| ·纳米粒子对肿瘤组织和肿瘤细胞的定位 | 第18-19页 |
| ·肿瘤细胞多药耐药的逆转 | 第19页 |
| ·纳米粒子与癌症治疗 | 第19-24页 |
| ·纳米药物载体 | 第20-22页 |
| ·纳米缓控释药物载体 | 第20页 |
| ·纳米靶向药物载体 | 第20-21页 |
| ·磁性纳米药物载体 | 第21-22页 |
| ·纳米基因载体 | 第22-23页 |
| ·其他类型纳米粒子 | 第23-24页 |
| ·壳聚糖纳米粒作为药物载体的研究进展 | 第24-35页 |
| ·壳聚糖纳米粒的制备方法 | 第25-29页 |
| ·凝聚/沉淀法 | 第25页 |
| ·大分子复合法 | 第25-26页 |
| ·自组装法 | 第26页 |
| ·乳化挥发法 | 第26-27页 |
| ·共价交联法 | 第27-28页 |
| ·离子凝胶法 | 第28-29页 |
| ·壳聚糖纳米粒负载药物的种类 | 第29-30页 |
| ·疏水性药物 | 第29页 |
| ·亲水性药物 | 第29-30页 |
| ·壳聚糖纳米粒对药物的负载 | 第30-31页 |
| ·物理包埋法 | 第30页 |
| ·化学结合法 | 第30-31页 |
| ·静电作用法 | 第31页 |
| ·壳聚糖载药纳米粒对药物的释放 | 第31页 |
| ·壳聚糖载药纳米粒的应用 | 第31-34页 |
| ·抗癌药物载体 | 第32页 |
| ·基因治疗 | 第32-33页 |
| ·鼻腔给药 | 第33页 |
| ·眼部给药 | 第33-34页 |
| ·壳聚糖载药纳米粒研究的生物学效应 | 第34-35页 |
| ·改性壳聚糖作为纳米药物载体的研究进展 | 第35-41页 |
| ·改性壳聚糖纳米粒的制备及自组装特性研究 | 第36-38页 |
| ·改性壳聚糖纳米粒的制备 | 第36-37页 |
| ·超声法 | 第36页 |
| ·透析法 | 第36-37页 |
| ·乳化法 | 第37页 |
| ·改性壳聚糖纳米粒的自组装特性研究 | 第37-38页 |
| ·改性壳聚糖作为纳米药物载体的研究进展 | 第38-41页 |
| ·亲水改性壳聚糖自组装作为纳米药物载体 | 第38-39页 |
| ·疏水改性壳聚糖自组装作为纳米药物载体 | 第39-40页 |
| ·亲水疏水改性壳聚糖自组装作为纳米药物载体 | 第40-41页 |
| ·本论文的选题依据及研究内容 | 第41-44页 |
| ·选题依据 | 第41-42页 |
| ·研究内容 | 第42页 |
| ·技术路线 | 第42-44页 |
| 1 油酰壳聚糖纳米粒的制备及理化性能研究 | 第44-61页 |
| ·材料 | 第45页 |
| ·药品与试剂 | 第45页 |
| ·仪器 | 第45页 |
| ·方法 | 第45-49页 |
| ·不同分子量壳聚糖(CS)样品的制备及性质测定 | 第45-47页 |
| ·CS的降解 | 第45-46页 |
| ·CS样品粘均分子量的测定 | 第46页 |
| ·CS样品脱乙酰度的测定 | 第46-47页 |
| ·CS样品的红外光谱检测 | 第47页 |
| ·油酰壳聚糖(OCS)的制备及性质测定 | 第47-49页 |
| ·OCS的制备 | 第47-48页 |
| ·OCS的性质检测 | 第48-49页 |
| ·OCS的红外光谱检测 | 第48页 |
| ·OCS的核磁光谱测定 | 第48页 |
| ·OCS的取代度测定 | 第48-49页 |
| ·OCS纳米粒的制备及性质测定 | 第49页 |
| ·OCS纳米粒的制备 | 第49页 |
| ·OCS纳米粒的性质测定 | 第49页 |
| ·OCS纳米粒的粒径分布 | 第49页 |
| ·OCS纳米粒的透射电镜观察 | 第49页 |
| ·结果与讨论 | 第49-60页 |
| ·CS的降解与性质测定 | 第49-52页 |
| ·CS粘均分子量的测定 | 第49-50页 |
| ·CS脱乙酰度的测定 | 第50-52页 |
| ·CS红外光谱分析 | 第52页 |
| ·OCS的性质测定 | 第52-55页 |
| ·OCS的红外光谱 | 第53-54页 |
| ·OCS的核磁光谱 | 第54-55页 |
| ·OCS的取代度分析 | 第55页 |
| ·OCS纳米粒的性质测定 | 第55-60页 |
| ·OCS纳米粒的粒径分布 | 第56-58页 |
| ·OCS纳米粒的形态表征 | 第58-60页 |
| ·小结 | 第60-61页 |
| 2 油酰壳聚糖纳米粒的生物相容性研究 | 第61-77页 |
| ·材料 | 第62-63页 |
| ·药品与试剂 | 第62页 |
| ·仪器 | 第62-63页 |
| ·方法 | 第63-66页 |
| ·OCS纳米粒的血液相容性检测 | 第63-65页 |
| ·红细胞溶血实验 | 第63-64页 |
| ·蛋白吸附实验 | 第64-65页 |
| ·牛血清白蛋白(BSA)及小牛血清(BCS)总蛋白标准曲线的绘制 | 第64页 |
| ·OCS纳米粒对BSA及BCS总蛋白吸附的定量测定 | 第64页 |
| ·OCS纳米粒对BSA及BCS总蛋白吸附的聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)分析 | 第64-65页 |
| ·OCS纳米粒的细胞毒性检测 | 第65-66页 |
| ·MEF的原代培养及传代培养 | 第65-66页 |
| ·MTT检验 | 第66页 |
| ·结果与讨论 | 第66-76页 |
| ·红细胞溶血试验 | 第66-67页 |
| ·蛋白吸附实验 | 第67-74页 |
| ·牛血清白蛋白(BSA)及小牛血清(BCS)总蛋白的标准曲线 | 第67-69页 |
| ·Bradford法测定OCS纳米粒对蛋白的吸附 | 第69-72页 |
| ·SDS-PAGE | 第72-74页 |
| ·OCS纳米粒对BSA的吸附 | 第72-73页 |
| ·OCS纳米粒对BCS总蛋白的吸附 | 第73-74页 |
| ·OCS纳米粒的细胞相容性 | 第74-76页 |
| ·小结 | 第76-77页 |
| 3 油酰壳聚糖纳米粒对阿霉素的负载与体外释放 | 第77-91页 |
| ·材料 | 第78-79页 |
| ·药品与试剂 | 第78页 |
| ·仪器 | 第78-79页 |
| ·方法 | 第79-81页 |
| ·载药油酰壳聚糖纳米粒的制备及性质测定 | 第79-80页 |
| ·载药油酰壳聚糖纳米粒的制备 | 第79页 |
| ·DOX-OCS纳米粒的性质测定 | 第79-80页 |
| ·DOX-OCS纳米粒的红外光谱检测 | 第79-80页 |
| ·DOX-OCS纳米粒的粒径分布 | 第80页 |
| ·DOX-OCS纳米粒的透射电镜观察 | 第80页 |
| ·DOX标准曲线的绘制 | 第80页 |
| ·DOX-OCS纳米粒载药率与载药量的测定 | 第80-81页 |
| ·DOX-OCS纳米粒的体外药物释放 | 第81页 |
| ·结果与讨论 | 第81-90页 |
| ·DOX的标准曲线 | 第81-83页 |
| ·DOX-OCS纳米粒的性质测定 | 第83-85页 |
| ·DOX-OCS纳米粒的红外光谱 | 第83页 |
| ·DOX-OCS纳米粒的粒径分布 | 第83-84页 |
| ·DOX-OCS纳米粒的形态表征 | 第84-85页 |
| ·DOX-OCS纳米粒的载药率与载药量 | 第85-86页 |
| ·DOX-OCS纳米粒的体外药物释放 | 第86-90页 |
| ·小结 | 第90-91页 |
| 4 载药油酰壳聚糖纳米粒的体外、体内抑瘤效果 | 第91-105页 |
| ·材料 | 第92页 |
| ·药品与试剂 | 第92页 |
| ·仪器 | 第92页 |
| ·方法 | 第92-94页 |
| ·DOX-OCS纳米粒对肿瘤细胞生长的抑制 | 第92-93页 |
| ·肿瘤细胞培养 | 第93页 |
| ·肿瘤细胞生长抑制实验 | 第93页 |
| ·DOX-OCS纳米粒对小鼠S180实体瘤的抑制作用 | 第93-94页 |
| ·S180细胞培养 | 第93-94页 |
| ·S180荷瘤小鼠模型的建立 | 第94页 |
| ·抑瘤实验 | 第94页 |
| ·结果与讨论 | 第94-103页 |
| ·肿瘤细胞体外生长抑止实验 | 第94-100页 |
| ·空白纳米粒(OCS纳米粒)对肿瘤细胞生长的抑制 | 第94-95页 |
| ·DOX-OCS纳米粒对肿瘤细胞生长的抑制 | 第95-100页 |
| ·抑瘤实验 | 第100-103页 |
| ·肿瘤生长曲线 | 第101-102页 |
| ·小鼠体重变化 | 第102-103页 |
| ·小结 | 第103-105页 |
| 5 油酰壳聚糖纳米粒的细胞摄取及组织分布研究 | 第105-125页 |
| ·材料 | 第106-107页 |
| ·药品与试剂 | 第106页 |
| ·仪器 | 第106-107页 |
| ·方法 | 第107-111页 |
| ·FITC-OCS的制备及性质测定 | 第107-108页 |
| ·FITC-OCS的制备 | 第107-108页 |
| ·FITC-OCS纳米粒的制备 | 第108页 |
| ·FITC-OCS纳米粒的粒径分布 | 第108页 |
| ·FITC从FITC-OCS纳米粒上的解离 | 第108页 |
| ·FITC-OCS纳米粒的细胞毒性 | 第108-109页 |
| ·A549及RAW264.7细胞培养 | 第108-109页 |
| ·FITC-OCS纳米粒的细胞毒性测定 | 第109页 |
| ·FITC-OCS纳米粒的体外细胞摄取研究 | 第109-110页 |
| ·A549和RAW264.7细胞对FITC-OCS纳米粒摄取的定量测定 | 第109-110页 |
| ·A549和RAW264.7细胞对FITC-OCS纳米粒摄取的显微镜观察 | 第110页 |
| ·FITC-OCS纳米粒的组织分布 | 第110-111页 |
| ·FITC-OCS纳米粒的组织分布的定量检测 | 第110-111页 |
| ·FITC-OCS纳米粒的组织分布的荧光显微镜观察 | 第111页 |
| ·结果与讨论 | 第111-124页 |
| ·FITC-OCS纳米粒的性质测定 | 第111页 |
| ·FITC从纳米粒上的解离 | 第111-112页 |
| ·细胞毒性检测 | 第112-114页 |
| ·FITC-OCS纳米粒的细胞摄取 | 第114-122页 |
| ·A549细胞对FITC-OCS纳米粒的摄取 | 第114-118页 |
| ·纳米粒的浓度对细胞摄取的影响 | 第114-115页 |
| ·培养时间对细胞摄取的影响 | 第115-116页 |
| ·取代度对细胞摄取的影响 | 第116页 |
| ·荧光显微镜观察 | 第116-118页 |
| ·RAW264.7细胞对FITC-OCS纳米粒的摄取 | 第118-122页 |
| ·纳米粒的浓度对细胞摄取的影响 | 第118-119页 |
| ·作用时间对细胞摄取的影响 | 第119-120页 |
| ·荧光显微镜观察 | 第120-122页 |
| ·纳米粒的组织分布 | 第122-124页 |
| ·FITC-OCS纳米粒的组织分布的定量测定 | 第122-123页 |
| ·FITC-OCS纳米粒的组织分布的荧光显微镜观察 | 第123-124页 |
| ·小结 | 第124-125页 |
| 全文总结 | 第125-129页 |
| 参考文献 | 第129-145页 |
| 附录 | 第145-146页 |
| 致谢 | 第146-147页 |
| 个人简历 | 第147页 |
| 发表的学术论文 | 第147-148页 |
| 博士研究生期间所获奖励 | 第148页 |
