| 英文缩略表 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 前言 | 第9-11页 |
| 材料与方法 | 第11-19页 |
| 1.材料 | 第11-14页 |
| 1.1 实验仪器与设备 | 第11页 |
| 1.2 实验试剂 | 第11-12页 |
| 1.3 主要试剂的配制 | 第12-14页 |
| 1.3.1 I型胶原酶消化液配制 | 第12-13页 |
| 1.3.2 成骨诱导分化完全培养基配制 | 第13页 |
| 1.3.3 成脂诱导分化完全培养基配制 | 第13-14页 |
| 2 方法 | 第14-18页 |
| 2.1 成人脂肪干细胞的分离培养、鉴定 | 第14-15页 |
| 2.1.1 成人脂肪干细胞的分离培养 | 第14页 |
| 2.1.2 成人脂肪干细胞的鉴定成骨分化实验 | 第14-15页 |
| 2.1.2.1 成骨分化实验 | 第14页 |
| 2.1.2.2 成脂分化实验 | 第14-15页 |
| 2.1.2.3 间充质干细胞表面抗体的表达 | 第15页 |
| 2.2 h ADSCs对EAU治疗作用的研究 | 第15-18页 |
| 2.2.1 大鼠葡萄膜炎模型的建立及分组 | 第15页 |
| 2.2.2 脂肪间充质干细胞的移植 | 第15页 |
| 2.2.3 眼部炎症程度标准 | 第15-16页 |
| 2.2.4 病理组织学观察及组织学评分 | 第16页 |
| 2.2.5 免疫组织化学检测各组大鼠视网膜IFN-γ和IL-17 表达 | 第16-17页 |
| 2.2.6 流式细胞术检测各组Th1、Th17、Treg细胞含量 | 第17-18页 |
| 3 数据处理 | 第18-19页 |
| 结果 | 第19-30页 |
| 1 h ADSCs的分离、培养 | 第19页 |
| 2 h ADSCs的成脂、成骨实验 | 第19-20页 |
| 3 h ADSCs表面抗体鉴定 | 第20页 |
| 4 h ADSCs对EAU大鼠临床表现的影响 | 第20-23页 |
| 5 h ADSCs对EAU大鼠病理组织学改变的影响 | 第23-25页 |
| 6 h ADSCs抑制视网膜组织IFN-γ、IL-17 的表达 | 第25-27页 |
| 7 h ADSCs对EAU大鼠脾脏中T细胞亚群的影响 | 第27-30页 |
| 讨论 | 第30-33页 |
| 结论 | 第33-34页 |
| 参考文献 | 第34-36页 |
| 综述 | 第36-43页 |
| 参考文献 | 第41-43页 |
| 致谢 | 第43-44页 |
