| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第12-28页 |
| 1.1 糖胺聚糖及其类似物 | 第12-16页 |
| 1.1.1 糖胺聚糖 | 第12-13页 |
| 1.1.2 糖胺聚糖类似物 | 第13-14页 |
| 1.1.3 糖胺聚糖类似物的制备方法 | 第14-16页 |
| 1.1.3.1 带活性基团的单体聚合制备糖胺聚糖类似物 | 第14-15页 |
| 1.1.3.2 化学处理法制备糖胺聚糖类似物 | 第15-16页 |
| 1.1.3.3 等离子体处理法制备糖胺聚糖类似物 | 第16页 |
| 1.2 糖胺聚糖及其类似物对细胞行为的影响 | 第16-24页 |
| 1.2.1 糖胺聚糖对细胞行为的影响 | 第16-22页 |
| 1.2.1.1 肝素/硫酸乙酰肝素对干细胞全能性的影响 | 第17-19页 |
| 1.2.1.2 肝素/硫酸乙酰肝素对干细胞分化行为的影响 | 第19-22页 |
| 1.2.2 肝素类似物对细胞行为的影响 | 第22-24页 |
| 1.2.2.1 肝素类似物对干细胞行为的影响 | 第22页 |
| 1.2.2.2 壳聚糖及其衍生物对干细胞行为的影响 | 第22-24页 |
| 1.3 糖胺聚糖及其类似物抗菌性能的研究 | 第24-25页 |
| 1.3.1 抗菌功能及抗菌剂 | 第24页 |
| 1.3.2 糖胺聚糖的抗菌作用 | 第24页 |
| 1.3.3 壳聚糖及其衍生物的抗菌功能 | 第24-25页 |
| 1.4 课题提出 | 第25-28页 |
| 1.4.1 研究的目的及意义 | 第25-26页 |
| 1.4.2 研究的内容及方案 | 第26-28页 |
| 第二章 磺化壳聚糖的制备及其对细胞增殖行为的影响 | 第28-42页 |
| 2.1 引言 | 第28-29页 |
| 2.2 实验部分 | 第29-38页 |
| 2.2.1 材料及试剂 | 第29-31页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第31-32页 |
| 2.2.3 定位磺化壳聚糖的合成 | 第32-33页 |
| 2.2.3.1 2-N-磺化壳聚糖(2S)的合成 | 第32页 |
| 2.2.3.2 6-O-磺化壳聚糖(6S)的合成 | 第32-33页 |
| 2.2.3.3 2-N6O-磺化壳聚糖(26S)合成 | 第33页 |
| 2.2.3.4 3,6-O-磺化壳聚糖(36S)的合成 | 第33页 |
| 2.2.4 磺化壳聚糖的测试与表征 | 第33页 |
| 2.2.5 细胞的培养 | 第33-37页 |
| 2.2.5.1 培养液及溶液的配制 | 第33-35页 |
| 2.2.5.2 普通细胞的培养 | 第35页 |
| 2.2.5.3 小鼠胚胎干细胞的培养 | 第35-37页 |
| 2.2.6 细胞增殖及毒性实验 | 第37-38页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第38-41页 |
| 2.3.1 红外光谱分析 | 第38页 |
| 2.3.2 元素分析 | 第38-39页 |
| 2.3.3 磺化壳聚糖对普通细胞增殖的影响 | 第39-41页 |
| 2.4 本章小结 | 第41-42页 |
| 第三章 定位磺化壳聚糖对胚胎干细胞神经分化的影响 | 第42-58页 |
| 3.1 引言 | 第42-43页 |
| 3.2 实验部分 | 第43-49页 |
| 3.2.1 实验原料及仪器 | 第43-44页 |
| 3.2.2 磺化壳聚糖的合成 | 第44页 |
| 3.2.3 磺化壳聚糖的测试与表征 | 第44页 |
| 3.2.4 培养液及溶液的配制 | 第44-45页 |
| 3.2.5 胚胎干细胞的分化实验 | 第45页 |
| 3.2.6 细胞免疫荧光染色 | 第45-46页 |
| 3.2.7 聚合酶链式反应 | 第46-49页 |
| 3.2.7.1 普通PCR | 第46-48页 |
| 3.2.7.2 实时荧光定量PCR | 第48-49页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第49-57页 |
| 3.3.1 元素分析 | 第49-50页 |
| 3.3.2 不同定位的磺化壳聚糖对干细胞神经分化的影响 | 第50-52页 |
| 3.3.3 不同磺化度的 6-O-磺化壳聚糖对干细胞神经分化的影响 | 第52-53页 |
| 3.3.4 双位点磺化的磺化壳聚糖对干细胞神经分化的影响 | 第53-55页 |
| 3.3.5 不同培养时间对干细胞神经分化的影响 | 第55页 |
| 3.3.6 培养液中不同浓度 6-O-磺化壳聚糖对干细胞神经分化的影响 | 第55-57页 |
| 3.4 本章小结 | 第57-58页 |
| 第四章 6-O-磺化壳聚糖改性材料的抗菌性能的研究 | 第58-73页 |
| 4.1 引言 | 第58-59页 |
| 4.2 实验部分 | 第59-66页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第59-60页 |
| 4.2.2 磺化壳聚糖改性壳聚糖膜材料的制备 | 第60-61页 |
| 4.2.2.1 壳聚糖膜的制备 | 第60页 |
| 4.2.2.2 壳聚糖膜表面修饰磺化壳聚糖 | 第60-61页 |
| 4.2.3 改性壳聚糖膜表面性质的表征 | 第61-63页 |
| 4.2.3.1 扫描电子显微镜(SEM) | 第61页 |
| 4.2.3.2 傅里叶红外光谱分析(IR) | 第61页 |
| 4.2.3.3 X射线光电子能谱(XPS) | 第61-62页 |
| 4.2.3.4 甲苯胺蓝染色法测表面 6S的接枝量 | 第62-63页 |
| 4.2.3.5 生物相容性测试 | 第63页 |
| 4.2.4 改性壳聚糖膜的抗菌性能的测试 | 第63-66页 |
| 4.2.4.1 平板涂布法测定材料的抗菌性能 | 第64-65页 |
| 4.2.4.2 MTT法测定材料的抗菌性能 | 第65-66页 |
| 4.2.4.3 膜片表面细菌观察 | 第66页 |
| 4.2.4.4 材料抗菌稳定性能测试 | 第66页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第66-72页 |
| 4.3.1 改性壳聚糖膜表面性质分析 | 第66-68页 |
| 4.3.2 改性壳聚糖膜表面磺化壳聚糖接枝量的测定 | 第68页 |
| 4.3.3 生物相容性测试 | 第68-69页 |
| 4.3.4 改性壳聚糖膜的抗菌活性 | 第69-71页 |
| 4.3.5 改性壳聚糖膜抗菌效果稳定性 | 第71-72页 |
| 4.4 本章小结 | 第72-73页 |
| 第五章 结论与展望 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-85页 |
| 硕士论文工作期间主要科研成果 | 第85-86页 |
| 致谢 | 第86-87页 |
